| 符号说明 | 第1-3页 |
| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 1 文献综述 | 第9-21页 |
| ·研究背景 | 第9-10页 |
| ·DNA多态性 | 第10页 |
| ·遗传图谱构建过程 | 第10-16页 |
| ·作图群体的选择 | 第10-11页 |
| ·主要作图群体 | 第11-13页 |
| ·F_2群体 | 第11-12页 |
| ·永久性F_2群体 | 第12页 |
| ·RIL群体 | 第12-13页 |
| ·DH群体 | 第13页 |
| ·回交群体 | 第13页 |
| ·遗传标记的选择 | 第13-15页 |
| ·形态学标记 | 第13页 |
| ·细胞学标记 | 第13-14页 |
| ·生化标记 | 第14页 |
| ·DNA分子标记 | 第14-15页 |
| ·遗传图谱的构建 | 第15-16页 |
| ·蒺藜苜蓿遗传图谱构建研究进展 | 第16-17页 |
| ·QTL定位方法及蒺藜苜蓿QTL研究进展 | 第17-21页 |
| ·QTL定位方法 | 第17-19页 |
| ·单标记法(Single-Marker QTL analysis,SM) | 第17-18页 |
| ·区间作图法(Interval Mapping,IM) | 第18页 |
| ·复合区间作图法(Composite Interval Mapping,CIM) | 第18-19页 |
| ·复区间作图法(Multiple Interval Mapping,MIM) | 第19页 |
| ·混合线性模型的复合区间作图法(Mixed Composite Interval Mapping,MCIM) | 第19页 |
| ·QTL定位在蒺藜苜蓿中的应用及研究进展 | 第19-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-25页 |
| ·试验材料及田间设计 | 第21页 |
| ·试验地概况 | 第21页 |
| ·试验材料 | 第21页 |
| ·田间试验设计与管理 | 第21页 |
| ·试验方法 | 第21-25页 |
| ·播种方法 | 第21页 |
| ·数量性状调查 | 第21-22页 |
| ·分子标记 | 第22-23页 |
| ·基因组DNA提取 | 第22页 |
| ·PCR反应体系和PCR扩增程序 | 第22页 |
| ·PCR扩增产物的电泳检测 | 第22-23页 |
| ·引物来源及稀释方法 | 第23页 |
| ·EST-SSR引物设计 | 第23-24页 |
| ·蒺藜苜蓿EST序列中SSR的检索 | 第23页 |
| ·EST-SSRs引物设计 | 第23-24页 |
| ·数据分析 | 第24-25页 |
| ·数据统计 | 第24页 |
| ·遗传图谱的构建 | 第24页 |
| ·QTL分析 | 第24-25页 |
| 3 结果与分析 | 第25-39页 |
| ·蒺藜苜蓿EST-SSR引物设计 | 第25-27页 |
| ·蒺藜苜蓿EST-SSRs的检索及分布特征 | 第25-26页 |
| ·引物设计 | 第26-27页 |
| ·EST-SSR和SSR标记的多态性分析及遗传结构评估 | 第27-28页 |
| ·SSR标记的多态性分析 | 第27页 |
| ·SSR标记在RIL8群体中的分布 | 第27-28页 |
| ·蒺藜苜蓿RIL群体的遗传结构评估 | 第28页 |
| ·遗传图谱的构建 | 第28-33页 |
| ·图谱的构建 | 第28-32页 |
| ·偏分离标记在遗传图谱中分布 | 第32-33页 |
| ·疾藜苜清重要农艺性状的QTL定位 | 第33-39页 |
| 4 讨论 | 第39-44页 |
| ·EST-SSRs标记的开发及分布特征 | 第39-40页 |
| ·EST-SSRs的分布特征 | 第39页 |
| ·EST-SSRs标记的开发 | 第39-40页 |
| ·利用SSR标记构建蒺藜苜蓿遗传图谱 | 第40-42页 |
| ·分子标记的偏分离分析 | 第40-41页 |
| ·偏分离存在的原因 | 第41-42页 |
| ·蒺藜苜蓿遗传图谱的构建 | 第42页 |
| ·QTL分析 | 第42-44页 |
| 5 结论 | 第44-45页 |
| ·蒺藜苜蓿EST-SSR标记的开发 | 第44页 |
| ·蒺藜苜蓿遗传图谱的构建 | 第44页 |
| ·蒺藜苜蓿QTL定位 | 第44-45页 |
| 附件1：CTAB法提取DNA | 第45-46页 |
| 附件2：PCR反应体系、电泳试剂配比 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 作者简介 | 第56-57页 |
