| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1 引言 | 第12-24页 |
| ·ND研究进展 | 第12-16页 |
| ·NDV的形态结构 | 第12-13页 |
| ·NDV的理化性质 | 第13页 |
| ·NDV的培养特点 | 第13页 |
| ·NDV的检测和诊断 | 第13-14页 |
| ·ND的防治 | 第14-16页 |
| ·TOLL7研究进展 | 第16-19页 |
| ·Toll样受体家族概况 | 第16-17页 |
| ·chTLRs家族成员 | 第17页 |
| ·chTLR7的发现及其配体 | 第17页 |
| ·chTLR7的分布 | 第17-18页 |
| ·chTLR7介导的转导途径 | 第18页 |
| ·chTLR7生物学功能 | 第18-19页 |
| ·细胞凋亡研究进展 | 第19-22页 |
| ·细胞凋亡概念 | 第19页 |
| ·细胞凋亡形态学变化特征 | 第19页 |
| ·细胞凋亡的生物化学特征 | 第19-20页 |
| ·细胞凋亡的检测 | 第20-21页 |
| ·病毒感染与细胞凋亡的关系 | 第21页 |
| ·细胞凋亡的生物学意义 | 第21-22页 |
| ·TLRs与细胞凋亡的关系 | 第22页 |
| ·研究的目的与意义 | 第22-24页 |
| 2 材料和方法 | 第24-39页 |
| ·实验材料 | 第24-26页 |
| ·病毒 | 第24页 |
| ·实验动物 | 第24页 |
| ·质粒、工程菌、细胞株 | 第24页 |
| ·主要生物制剂和化学试剂 | 第24-25页 |
| ·主要仪器设备 | 第25-26页 |
| ·实验方法 | 第26-39页 |
| ·NDV增殖、纯化、毒价测定 | 第26-27页 |
| ·chTLR7、chMyD88、chIFN-α、chIL-2 mRNA检测 | 第27-32页 |
| ·chTLR7多抗制备及生物活性测定 | 第32-37页 |
| ·chTLR7在NDV诱导CEF凋亡中的作用 | 第37-39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-63页 |
| ·NDV的增殖及毒价测定 | 第39-40页 |
| ·NDV在CEF的增殖 | 第39页 |
| ·NDV TCID_(50)及血凝效价的测定 | 第39-40页 |
| ·CHTLR7、CHMYD88、CHIFN-A、CHIL-2 MRNA表达动态变化 | 第40-50页 |
| ·提取CEF总RNA | 第40页 |
| ·chTLR7、chMyD88、chIFN-α、chIL-2、chβ-actin目的基因扩增 | 第40-41页 |
| ·重组质粒PCR及酶切鉴定结果 | 第41-43页 |
| ·重组质粒序列测定 | 第43-44页 |
| ·绘制重组质粒标准曲线 | 第44-47页 |
| ·chTLR7、chMyD88、chIFN-α、chIL-2 mRNA表达动态变化 | 第47-50页 |
| ·CHTLR7多抗制备及生物活性测定 | 第50-61页 |
| ·chTLR7序列分析 | 第50-51页 |
| ·chTLR7基因的扩增 | 第51-52页 |
| ·重组表达质粒PGEX-6P-1-chTLR7 PCR和双酶切鉴定结果 | 第52页 |
| ·重组质粒PGEX-6P-1-chTLR7序列测定 | 第52-53页 |
| ·chTLR7重组蛋白的表达 | 第53-54页 |
| ·chTLR7蛋白表达条件的优化 | 第54-57页 |
| ·chTLR7蛋白的纯化 | 第57-58页 |
| ·chTLR7多克隆抗体检测 | 第58-61页 |
| ·CHTLR7在NDV诱导CEF凋亡中的作用 | 第61-63页 |
| ·CEF感染NDV后细胞凋亡的动态变化 | 第61页 |
| ·chTLR7在NDV诱导CEF凋亡中的作用 | 第61-63页 |
| 4 讨论 | 第63-66页 |
| ·NDV感染CEF后CHTLR7及其信号传导通路中相关因子表达的变化 | 第63-64页 |
| ·CHTLR7多抗的制备及其生物活性检测 | 第64页 |
| ·CHTLR7在NDV感染CEF凋亡中的作用 | 第64-66页 |
| 5 结论 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-74页 |
| 附录 | 第74-76页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学位论文 | 第76页 |
