摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
縮略词表 | 第10-11页 |
前言 | 第11-12页 |
第一章 细胞微囊研究进展 | 第12-22页 |
·细胞微囊 | 第12-17页 |
·微囊的免疫隔离机理 | 第12-14页 |
·微囊的材料 | 第14-15页 |
·海藻酸钠的来源和结构 | 第15页 |
·微囊的制作 | 第15-17页 |
·松果体和褪黑素 | 第17-22页 |
·松果体的生理学和药理学 | 第17-18页 |
·褪黑素的代谢和作用机理 | 第18页 |
·褪黑素的作用 | 第18-20页 |
·抗自由基 | 第18-19页 |
·对神经系统的影响 | 第19页 |
·增强免疫功能的影响 | 第19页 |
·睡眠和昼夜节律 | 第19页 |
·抗老化 | 第19-20页 |
·抗肿瘤作用 | 第20页 |
·消化系统 | 第20-21页 |
·心血管系统 | 第21页 |
·肾脏 | 第21页 |
·生殖系统 | 第21-22页 |
第2章 松果体细胞的培养和检测 | 第22-32页 |
·研究目的和意义 | 第22页 |
·材料与方法 | 第22-24页 |
·主要药品与试剂 | 第22-24页 |
·细胞培养相关试剂及配制 | 第22-23页 |
·免疫组化相关试剂和配置 | 第23-24页 |
·实验器材 | 第24页 |
·实验方法 | 第24-27页 |
·松果体细胞培养 | 第24-27页 |
·原代培养 | 第24-25页 |
·传代培养 | 第25页 |
·松果体细胞体外培养生物学特性观察 | 第25-26页 |
·松果体的冻存 | 第26页 |
·松果体细胞的复苏 | 第26页 |
·5-HT免疫组化 | 第26-27页 |
·MTT法观察细胞的增值情况 | 第27页 |
·实验结果与分析 | 第27-30页 |
·松果体细胞形态 | 第27-28页 |
·松果体细胞增殖测定 | 第28-29页 |
·松果体细胞免疫组化 | 第29-30页 |
·实验讨论 | 第30-31页 |
·松果体细胞研究的意义 | 第30页 |
·培养方法的确定 | 第30页 |
·生长曲线 | 第30页 |
·松果体鉴定 | 第30-31页 |
·结论 | 第31-32页 |
第3章 松果体细胞微囊化的检测 | 第32-48页 |
·实验材料 | 第32-34页 |
·松果体细胞微囊化实验材料 | 第32页 |
·高效液相色谱试剂 | 第32页 |
·Elisa试剂 | 第32-33页 |
·实验动物 | 第33页 |
·实验仪器 | 第33-34页 |
·试验方法 | 第34-37页 |
·松果体褪黑素(M T)HPLC检测 | 第34页 |
·HPLC的液相色谱的条件的建立 | 第34页 |
·松果体细胞样品处理 | 第34页 |
·松果体褪黑素的标准曲线的建立 | 第34页 |
·松果体细胞微囊制作 | 第34-35页 |
·空位囊的制作 | 第34-35页 |
·松果体细胞微囊的制作 | 第35页 |
·动物实验 | 第35-36页 |
·昆明种小鼠IL-1α及TNF-α的ELISA检测 | 第36-37页 |
·IL-1α及TNF-α的检测 | 第36-37页 |
·昆明种小鼠白细胞检测 | 第37页 |
·统计与分析 | 第37页 |
·实验结果 | 第37-44页 |
·M T色谱峰的鉴定 | 第37-39页 |
·M T标准曲线的确定 | 第39页 |
·松果体细胞样品的测定 | 第39-40页 |
·空微囊的制作 | 第40-41页 |
·松果体细胞微囊的制作 | 第41页 |
·移植细胞微囊于昆明种小鼠 | 第41-44页 |
·昆明种小鼠白细胞,IL-1α,TNF-α变化 | 第41-44页 |
·讨论 | 第44-47页 |
·M T方法的选择 | 第44-45页 |
·高效液相色谱的实验条件确定 | 第45页 |
·微囊的制作 | 第45页 |
·微囊的组织相容性研究 | 第45-47页 |
·结论 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-57页 |
致谢 | 第57页 |