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重组人粒细胞集落刺激因子生产工艺的研究

第一章 文献综述第1-22页
 1.1 引言第11-12页
 1.2 粒细胞集落刺激因子(G-CSF)概述第12-14页
  1.2.1 G-CSF的生物学功能第12-13页
  1.2.2 G-CSF发酵生产研究概况第13-14页
 1.3 基因工程菌发酵工艺的优化第14-15页
  1.3.1 培养基的影响第14页
  1.3.2 培养条件的影响第14-15页
   1.3.2.1 温度第14-15页
   1.3.2.2 pH第15页
   1.3.2.3 溶氧(DO)第15页
   1.3.2.4 代谢副产物的抑制作用第15页
   1.3.2.5 比生长速率和比产率第15页
 1.4 基因工程菌的高密度培养第15-17页
  1.4.1 重组大肠杆菌高密度培养概述第15-16页
  1.4.2 高密度发酵补料调控第16-17页
 1.5 基因工程药用蛋白的分离、纯化与复性第17-20页
  1.5.1 重组蛋白的复性第18页
  1.5.2 G-CSF的分离、纯化与复性第18-20页
 参考文献第20-22页
第二章 实验部分第22-32页
 2.1 仪器与试剂第22-23页
  2.1.1 rhG-CSF发酵所需仪器与试剂第22-23页
   2.1.1.1 仪器第22页
   2.1.1.2 试剂第22-23页
  2.1.2 rhG-CSF分离纯化所需仪器与试剂第23页
   2.1.2.1 仪器第23页
   2.1.2.2 试剂第23页
 2.2 实验方法第23-26页
  2.2.1 菌种第23页
  2.2.2 培养基的配制第23-24页
   2.2.2.1 液体培养基的配制第24页
   2.2.2.2 LB固体培养基的配制第24页
   2.2.2.3 微量元素的配制第24页
  2.2.3 培养方法第24-26页
   2.2.3.1 菌种复苏第24页
   2.2.3.2 菌种筛选第24-25页
   2.2.3.3 5L发酵罐间歇培养第25页
   2.2.3.4 5L发酵罐分批流加培养第25页
   2.2.3.5 感受态细胞的制备第25-26页
   2.2.3.6 大肠杆菌的转化第26页
 2.3 结果分析第26-31页
  2.3.1 菌体浓度第26页
  2.3.2 细胞干重的测定第26页
  2.3.3 rhG-CSF表达量第26-27页
  2.3.4 SDS-PAGE第27-29页
  2.3.5 PH第29页
  2.3.6 Bradford比色法测定蛋白质含量第29-31页
 参考文献第31-32页
第三章 重组大肠杆菌DH5a/pBV220发酵培养基的优化研究第32-44页
 3.1 前言第32-33页
 3.2 不同培养基种类对工程菌生长和表达的影响第33页
 3.3 M9培养基的优化第33-41页
  3.3.1 碳源种类的选择第33-35页
  3.3.2 氮源种类的选择第35-37页
  3.3.3 优化培养基配方第37-41页
   3.3.3.1 培养基中碳源和氮源配比的优化第37-40页
   3.3.3.2 无机盐配方的优化第40-41页
 3.4 优化培养基中工程菌DH5α/pBV220的培养第41-42页
 3.5 小结第42-43页
 参考文献第43-44页
第四章 重组大肠杆菌DH5α/pBV220摇瓶发酵工艺的研究第44-55页
 4.1 前言第44页
 4.2 培养温度对工程菌生长和rhG-CSF表达的影响第44-45页
 4.3 pH值对工程菌生长和rhG-CSF表达的影响第45-46页
 4.4 摇瓶溶氧对工程菌生长和rhG-CSF表达的影响第46-48页
  4.4.1 装液量对工程菌生长和rhG-CSF表达的影响第46-47页
  4.4.2 摇床转速对工程菌生长和rhG-CSF表达的影响第47-48页
 4.5 诱导时机对工程菌生长和rhG-CSF表达的影响第48-50页
 4.6 诱导表达时间对工程菌生长和rhG-CSF表达的影响第50-51页
 4.7 种子菌龄对工程菌生长和rhG-CSF表达的影响第51-52页
 4.8 优化条件下工程菌的培养第52页
 4.9 小结第52-54页
 参考文献第54-55页
第五章 重组大肠杆菌DH5α/pBV220在5L发酵罐上的培养第55-68页
 5.1 前言第55页
 5.2 5L发酵罐分批培养第55-61页
  5.2.1 溶氧对工程菌生长和rhG-CSF表达的影响第55-57页
  5.2.2 微量元素和维生素对工程菌生长和rhG-CSF表达的影响第57-58页
  5.2.3 接种量对工程菌生长和rhG-CSF表达的影响第58-59页
  5.2.4 工程菌在M9Ⅳ培养基中分批培养的生长曲线及诱导时机第59-60页
  5.2.5 CT-5发酵罐中优化条件下重组大肠杆菌的分批培养第60-61页
 5.3 5L发酵罐补料分批培养第61-66页
  5.3.1 分批流加培养方案第61页
  5.3.2 工程菌DH5α/pBV220的生长曲线第61-62页
  5.3.3 pH值对工程菌的生长和rhG-CSF表达的影响第62-63页
  5.3.4 流加培养过程中溶氧对工程菌生长和rhG-CSF表达的影响第63-65页
   5.3.4.1 不控制溶氧的流加培养第63-64页
   5.3.4.2 控制溶氧的流加培养第64-65页
  5.3.5 重组大肠杆菌在优化条件下的流加培养第65-66页
 5.4 小结第66-67页
 参考文献第67-68页
第六章 rhG-CSF的分离纯化第68-77页
 6.1 前言第68页
 6.2 实验方法第68-69页
  6.2.1 菌体的收集和洗涤第68页
  6.2.2 包含体的纯化第68页
  6.2.3 包含体的溶液第68-69页
 6.3 高效疏水色谱对rhG-CSF的复性与同时纯化第69-75页
  6.3.1 洗脱梯度对rhG-CSF的复性与同时纯化的影响第69-70页
  6.3.2 流动相流速对rhG-CSF的复性与同时纯化的影响第70-71页
  6.3.3 不同洗脱条件下进样方式对rhG-CSF的复性与同时纯化的影响第71-72页
  6.3.4 pH对rhG-CSF的复性与同时纯化的影响第72-73页
  6.3.5 rhG-CSF的纯度和质量回收率第73-75页
 6.4 关于蛋白质质量回收率问题的讨论第75页
 6.5 小结第75-76页
 参考文献第76-77页
致谢第77页

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