中文摘要 | 第1-16页 |
ABSTRACT | 第16-18页 |
第一章 文献综述 | 第18-27页 |
·抑郁症及其发病机理 | 第18-20页 |
·中医对抑郁症病因病机的研究 | 第18-19页 |
·西医对抑郁症病因病机的研究 | 第19-20页 |
·应激与抑郁症及相关动物模型 | 第20-22页 |
·应激与抑郁 | 第20-21页 |
·与应激相关的抑郁动物模型 | 第21-22页 |
·肠道菌群、肠组织与抑郁症 | 第22-25页 |
·肠道菌群概述 | 第22-23页 |
·肠道菌群的生理功能 | 第23页 |
·肠道菌群与应激 | 第23-24页 |
·肠组织与抑郁症 | 第24-25页 |
·逍遥散及其抗抑郁机理 | 第25-27页 |
·逍遥散治疗抑郁症临床研究概况 | 第25页 |
·逍遥散抗抑郁作用及其作用机制研究概况 | 第25-27页 |
第二章 引言 | 第27-30页 |
·选题的目的与意义 | 第27页 |
·本文的主要研究思路、内容及创新点 | 第27-30页 |
·主要研究思路 | 第28页 |
·主要技术路线图 | 第28页 |
·主要研究内容 | 第28-29页 |
·主要创新点 | 第29-30页 |
第三章 抑郁动物模型复制、药物干预及材料收集 | 第30-37页 |
·引言 | 第30页 |
·材料与仪器 | 第30页 |
·仪器 | 第30页 |
·试剂与药材 | 第30页 |
·方法 | 第30-33页 |
·逍遥散复方的制备 | 第30页 |
·动物、分组及给药 | 第30-31页 |
·CUMS模型的复制 | 第31-32页 |
·检测指标 | 第32页 |
·样品的收集与保存 | 第32-33页 |
·统计分析 | 第33页 |
·结果 | 第33-35页 |
·CUMS对大鼠体重、行为学结果的影响 | 第33-34页 |
·逍遥散干预对CUMS模型大鼠体重和行为学的影响 | 第34-35页 |
·CUMS对大鼠盲肠的影响及逍遥散对盲肠的调节作用 | 第35页 |
·结论与讨论 | 第35-37页 |
第四章 大鼠不同部位肠道菌群ERIC-PCR指纹图谱研究 | 第37-47页 |
·引言 | 第37页 |
·材料与仪器 | 第37-38页 |
·仪器 | 第37页 |
·试剂 | 第37页 |
·溶液的配制 | 第37-38页 |
·方法 | 第38-39页 |
·样品的前处理 | 第38页 |
·基因组DNA的提取 | 第38-39页 |
·ERIC-PCR扩增 | 第39页 |
·琼脂糖电泳 | 第39页 |
·ERIC-PCR指纹图谱分析 | 第39页 |
·统计分析 | 第39页 |
·结果 | 第39-45页 |
·样品前处理条件的优化 | 第39-40页 |
·基因组DNA最佳提取条件的筛选 | 第40页 |
·ERIC-PCR最佳反应体系的建立 | 第40-41页 |
·不同部位肠道菌群结构特征分析 | 第41页 |
·正常对照组、模型组和逍遥散组盲肠菌群ERIC-PCR指纹图谱的构建 | 第41-43页 |
·正常对照组、模型组和盐酸氟西汀组盲肠菌群ERIC-PCR指纹图谱的构建 | 第43-45页 |
·Shannon-Wiener指数(多样性指数,H’)分析 | 第45页 |
·结论与讨论 | 第45-47页 |
第五章 大鼠盲肠菌群16S rRNA PCR-DGGE指纹图谱研究 | 第47-54页 |
·引言 | 第47页 |
·材料与仪器 | 第47-48页 |
·仪器 | 第47页 |
·试剂 | 第47页 |
·溶液的配制 | 第47-48页 |
·菌株 | 第48页 |
·方法 | 第48-50页 |
·样品的前处理 | 第48页 |
·基因组DNA的提取 | 第48页 |
·16S rDNA V3可变区PCR扩增 | 第48页 |
·变性梯度凝胶电泳 | 第48-49页 |
·DGGE凝胶条带的回收 | 第49页 |
·大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第49页 |
·PCR扩增产物与T载体的连接和转化 | 第49页 |
·序列测定与分析 | 第49-50页 |
·结果 | 第50-52页 |
·16S rDNA V3可变区PCR扩增最佳反应体系的建立 | 第50页 |
·正常对照组、模型组和逍遥散组盲肠菌群DGGE指纹图谱的构建 | 第50-51页 |
·正常对照组、模型组和盐酸氟西汀组盲肠菌群DGGE指纹图谱的构建 | 第51页 |
·DGGE凝胶条带最佳回收方法的优化 | 第51-52页 |
·引起差异的菌群鉴定 | 第52页 |
·结论与讨论 | 第52-54页 |
第六章 大鼠盲肠组织形态学和炎症应答相关基因表达研究 | 第54-63页 |
·引言 | 第54页 |
·材料与仪器 | 第54-55页 |
·仪器 | 第54页 |
·试剂 | 第54-55页 |
·方法 | 第55-56页 |
·盲肠组织切片制备与染色 | 第55页 |
·总RNA的提取 | 第55页 |
·cDNA第一链的合成 | 第55页 |
·RT-PCR扩增 | 第55-56页 |
·琼脂糖凝胶电泳 | 第56页 |
·数据分析 | 第56页 |
·结果 | 第56-61页 |
·盲肠组织形态学观察 | 第56-57页 |
·总RNA的提取 | 第57页 |
·内参基因的筛选 | 第57-58页 |
·正常对照组与模型组基因表达特征分析 | 第58-60页 |
·给药组基因表达特征分析 | 第60-61页 |
·结论与讨论 | 第61-63页 |
第七章 大鼠盲肠组织化学成分研究 | 第63-71页 |
·引言 | 第63页 |
·材料与仪器 | 第63-64页 |
·仪器 | 第63页 |
·试剂 | 第63页 |
·溶液的配制 | 第63-64页 |
·方法 | 第64页 |
·样品制备 | 第64页 |
·GC-MS条件 | 第64页 |
·多元统计分析 | 第64页 |
·结构指认 | 第64页 |
·结果 | 第64-69页 |
·样品制备方法的优化 | 第64-65页 |
·常对照组与模型组大鼠盲肠典型总离子流色谱图 | 第65-66页 |
·常对照组与模型组多元统计分析 | 第66-67页 |
·给药组大鼠盲肠典型总离子流色谱图 | 第67页 |
·给药组多元统计分析 | 第67-68页 |
·逍遥散组和模型组多元统计分析 | 第68-69页 |
·盐酸氟西汀组和模型组多元统计分析 | 第69页 |
·结论与讨论 | 第69-71页 |
第八章 总结与展望 | 第71-73页 |
·总结 | 第71-72页 |
·展望 | 第72-73页 |
参考文献 | 第73-85页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第85-86页 |
致谢 | 第86-87页 |
个人简况及联系方式 | 第87-89页 |