| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 文献综述 | 第10-31页 |
| 第一章 胚胎干细胞分化为生殖细胞的研究 | 第10-19页 |
| ·原始生殖细胞的发育 | 第10-14页 |
| ·环境因素的影响 | 第10-11页 |
| ·原始生殖细胞的起源和迁移 | 第11-12页 |
| ·影响原始生殖细胞发育的基因和因子 | 第12-14页 |
| ·胚胎干细胞分化为生殖细胞的研究进展 | 第14-15页 |
| ·RA 对于生殖细胞发育的作用 | 第15-16页 |
| ·生殖细胞的“龛”和ESCS | 第16-17页 |
| ·总结 | 第17-19页 |
| 第二章 STRA8 基因的发现及其在诱导干细胞向生殖细胞分化的研究中的作用 | 第19-22页 |
| ·STRA8 基因的发现 | 第19页 |
| ·STRA8 蛋白的磷酸化形式 | 第19-20页 |
| ·STRA8 基因的表达 | 第20页 |
| ·STRA8 基因的应用 | 第20-22页 |
| 第三章 骨髓间充质干细胞 | 第22-31页 |
| ·骨髓MSCS 的形态学特征 | 第22页 |
| ·骨髓MSCS 分离方法 | 第22-23页 |
| ·细胞帖壁筛选法 | 第22页 |
| ·密度梯度离心法 | 第22-23页 |
| ·细胞表面分子标记分选法 | 第23页 |
| ·细胞筛筛选法 | 第23页 |
| ·MSCS 的多分化潜能 | 第23-28页 |
| ·MSCs 可塑性的体外实验证据 | 第23-26页 |
| ·MSCs 可塑性的体内实验证据 | 第26-28页 |
| ·MSCS 的分化调控机制 | 第28页 |
| ·临床应用及前景 | 第28-30页 |
| ·存在的问题及展望 | 第30-31页 |
| 实验研究 | 第31-56页 |
| 前言 | 第31页 |
| 第四章 STRA8-EGFP 载体的构建 | 第31-40页 |
| ·材料与方法 | 第32-37页 |
| ·材料 | 第32页 |
| ·实验方法 | 第32-37页 |
| ·实验结果 | 第37-39页 |
| ·PCR 产物 | 第37页 |
| ·酶切鉴定插入方向 | 第37-38页 |
| ·测序结果 | 第38页 |
| ·酶切鉴定连入pEGFP-1 | 第38-39页 |
| ·至此载体已基本构建成功，其模式图如图4-4 所示 | 第39页 |
| ·讨论 | 第39页 |
| ·小结 | 第39-40页 |
| 第五章 几种不同细胞的转化实验 | 第40-47页 |
| ·材料与方法 | 第40-43页 |
| ·材料 | 第40页 |
| ·实验方法 | 第40-43页 |
| ·实验结果 | 第43-45页 |
| ·分离培养12 天的mSSCs | 第43-44页 |
| ·培养的小鼠129 细胞 | 第44页 |
| ·分离培养的mMSCs | 第44页 |
| ·pStra8-EGFP 转化三种细胞 | 第44页 |
| ·用三种载体转化小鼠SSCs | 第44-45页 |
| ·讨论 | 第45-46页 |
| ·小结 | 第46-47页 |
| 第六章 诱导小鼠骨髓间充质干细胞向精原干细胞方向分化 | 第47-52页 |
| ·材料与方法 | 第47-49页 |
| ·材料 | 第47页 |
| ·实验方法 | 第47-49页 |
| ·实验结果 | 第49-50页 |
| ·荧光观察的结果 | 第49页 |
| ·RT-PCR 的结果 | 第49-50页 |
| ·讨论 | 第50页 |
| ·小结 | 第50-52页 |
| 第七章 STRA8 启动子的研究 | 第52-56页 |
| ·材料和方法 | 第52-53页 |
| ·材料 | 第52-53页 |
| ·实验方法 | 第53页 |
| ·试验结果 | 第53-54页 |
| ·载体模式图 | 第53-54页 |
| ·转化结果 | 第54页 |
| ·讨论 | 第54-55页 |
| ·小结 | 第55-56页 |
| 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 作者简介 | 第69页 |
