| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 引言 | 第10-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-24页 |
| ·帕金森病细胞及动物模型研究进展 | 第11-15页 |
| ·细胞凋亡与帕金森病 | 第11-12页 |
| ·细胞系 | 第12页 |
| ·细胞凋亡诱导剂及诱导方法 | 第12-15页 |
| ·神经干细胞与帕金森病 | 第15-20页 |
| ·神经干细胞概述 | 第16-17页 |
| ·神经干细胞治疗帕金森病的理论基础 | 第17-19页 |
| ·神经干细胞治疗帕金森病的策略 | 第19-20页 |
| ·问题与展望 | 第20页 |
| ·细胞共培养的方式 | 第20-23页 |
| ·混合培养 | 第21页 |
| ·间接接触 | 第21-23页 |
| ·小结 | 第23-24页 |
| 2 去血清诱导的PC12细胞凋亡模型 | 第24-38页 |
| ·实验材料与仪器 | 第24-28页 |
| ·实验材料 | 第24-25页 |
| ·实验所需溶液和试剂的配置 | 第25-28页 |
| ·实验仪器 | 第28页 |
| ·实验方法 | 第28-32页 |
| ·PC12细胞的培养及生长曲线的绘制 | 第28-29页 |
| ·去血清对PC12细胞的损伤 | 第29页 |
| ·Hoechst 33342染色观察细胞形态变化 | 第29-30页 |
| ·流式细胞仪分析细胞凋亡比率 | 第30-32页 |
| ·实验结果与讨论 | 第32-37页 |
| ·PC12细胞的生长曲线 | 第32页 |
| ·去血清引起PC12细胞损伤的时间关系 | 第32-33页 |
| ·Hoechst 33342染色观察细胞形态变化 | 第33-36页 |
| ·流式细胞仪分析细胞凋亡比率 | 第36-37页 |
| ·小结 | 第37-38页 |
| 3 海藻酸钙胶珠的制备及破囊工艺的优化 | 第38-45页 |
| ·实验材料与仪器 | 第38-39页 |
| ·实验材料 | 第38页 |
| ·实验所需溶液和试剂的配置 | 第38-39页 |
| ·实验仪器 | 第39页 |
| ·实验方法 | 第39-41页 |
| ·海藻酸钙胶珠破囊工艺的优化 | 第39-40页 |
| ·海藻酸钙胶珠与PC12细胞的共培养 | 第40-41页 |
| ·实验结果与讨论 | 第41-44页 |
| ·海藻酸钙胶珠破囊工艺的优化 | 第41-43页 |
| ·海藻酸钙胶珠与PC12细胞的共培养 | 第43-44页 |
| ·小结 | 第44-45页 |
| 4 神经干细胞对去血清诱导凋亡的PC12细胞的保护作用 | 第45-67页 |
| ·实验材料与设备 | 第45-46页 |
| ·实验动物与药品试剂 | 第45页 |
| ·实验仪器 | 第45-46页 |
| ·实验方法 | 第46-52页 |
| ·神经干细胞的培养 | 第46-48页 |
| ·神经干细胞对去血清诱导凋亡的PC12细胞的保护作用 | 第48-50页 |
| ·Hoechst 33342染色观察细胞形态变化 | 第50页 |
| ·流式细胞仪分析细胞凋亡比率 | 第50-51页 |
| ·流式细胞仪分析细胞周期 | 第51页 |
| ·不同培养条件下培养基中GDNF浓度的测定 | 第51-52页 |
| ·实验结果与讨论 | 第52-66页 |
| ·神经干细胞的培养 | 第52-55页 |
| ·神经干细胞对去血清诱导凋亡的PC12细胞的保护作用 | 第55-58页 |
| ·Hoechst 33342染色观察细胞形态变化 | 第58-61页 |
| ·流式细胞仪分析细胞凋亡比率 | 第61-62页 |
| ·流式细胞仪分析细胞周期 | 第62-65页 |
| ·不同培养条件下培养基中GDNF浓度的比较 | 第65-66页 |
| ·小结 | 第66-67页 |
| 5 结论与创新 | 第67-68页 |
| ·结论 | 第67页 |
| ·创新点 | 第67页 |
| ·下一步工作展望 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-74页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第74-75页 |
| 附录A 英文缩略表 | 第75-77页 |
| 致谢 | 第77-79页 |
| 大连理工大学学位论文版权使用授权书 | 第79页 |
