| 第一章 概述 | 第1-13页 |
| ·引言 | 第10-11页 |
| ·研究内容及意义 | 第11-12页 |
| ·研究内容 | 第11页 |
| ·研究意义 | 第11-12页 |
| ·对羟基苯甘氨酸的物化性质 | 第12-13页 |
| 第二章 文献综述 | 第13-33页 |
| ·手性的意义 | 第13-14页 |
| ·立体化学的发展 | 第14-15页 |
| ·立体化学中的概念与表征 | 第15-18页 |
| ·概念 | 第15-16页 |
| ·表征 | 第16-18页 |
| ·消旋方法论述 | 第18-22页 |
| ·酸催化消旋 | 第18-19页 |
| ·碱催化消旋 | 第19-20页 |
| ·酶催化消旋 | 第20-21页 |
| ·热消旋 | 第21页 |
| ·氧化还原作用(redox)和自由基消旋 | 第21-22页 |
| ·外消旋物拆分方法论述 | 第22-26页 |
| ·结晶法 | 第22-23页 |
| ·化学拆分法 | 第23-24页 |
| ·膜拆分法 | 第24页 |
| ·色谱拆分法 | 第24页 |
| ·酶促拆分法 | 第24-25页 |
| ·动力学拆分法 | 第25页 |
| ·不对称转换法 | 第25-26页 |
| ·DL-p-HPG的拆分方法和技术 | 第26-32页 |
| ·化学拆分法 | 第26-27页 |
| ·诱导结晶法 | 第27-28页 |
| ·离子自拆分法 | 第28-29页 |
| ·不对称转换法 | 第29-30页 |
| ·非手性试剂进行的不对称转换法 | 第29-30页 |
| ·手性试剂进行的不对称转换法 | 第30页 |
| ·酶促拆分法 | 第30-31页 |
| ·生物酶转换法 | 第31页 |
| ·目前生产及研究现状 | 第31-32页 |
| ·研究路线选择 | 第32-33页 |
| ·L-p-HPG的消旋路线 | 第32页 |
| ·DL-p-HPG的拆分路线 | 第32-33页 |
| 第三章 研究方案及反应机理 | 第33-42页 |
| ·消旋部分 | 第33-37页 |
| ·研究方案 | 第33页 |
| ·原料精制 | 第33页 |
| ·研究L-p-HPG在不同条件下的消旋 | 第33页 |
| ·消旋反应机理 | 第33-37页 |
| ·消旋反应的动力学 | 第33-35页 |
| ·碱消旋的反应机理 | 第35页 |
| ·酸催化消旋反应机理 | 第35-37页 |
| ·拆分部分 | 第37-42页 |
| ·研究方案 | 第37-38页 |
| ·诱导结晶拆分DL-p-HPG研究方案 | 第37页 |
| ·不对称转换拆分DL-p-HPG研究方案 | 第37-38页 |
| ·酶促拆分DL-p-HPG研究方案 | 第38页 |
| ·拆分反应机理 | 第38-42页 |
| ·诱导结晶拆分DL-p-HPG机理 | 第38页 |
| ·不对称转换拆分DL-p-HPG机理 | 第38-39页 |
| ·酶促拆分DL-p-HPG机理 | 第39-42页 |
| 第四章 实验与讨论 | 第42-72页 |
| ·主要原料及仪器 | 第42-43页 |
| ·原料精制 | 第43页 |
| ·L-p-HPG消旋研究 | 第43-51页 |
| ·L-p-HPG在碱溶液中的消旋 | 第44-45页 |
| ·L-p-HPG在酸溶液中的消旋 | 第45-51页 |
| ·溶剂影响 | 第45-47页 |
| ·催化剂影响 | 第47-49页 |
| ·温度影响 | 第49-50页 |
| ·醋酸浓度对消旋的影响 | 第50-51页 |
| ·DL-对羟基苯甘氨酸拆分研究 | 第51-72页 |
| ·诱导结晶拆分DL-p-HPG实验 | 第51-57页 |
| ·成盐反应 | 第51-52页 |
| ·浓度对诱导结晶影响 | 第52-53页 |
| ·温度对诱导结晶影响 | 第53-54页 |
| ·养晶时间对诱导结晶影响 | 第54-55页 |
| ·母液套用 | 第55-56页 |
| ·光学活性粗盐D-p-HPG.p-TS的精制 | 第56页 |
| ·光学活性D-p-HPG的制备 | 第56页 |
| ·L-p-HPG.p-TS在高温下的热消旋 | 第56-57页 |
| ·光学活性L-p-HPG.p-TS加压热消旋 | 第57页 |
| ·不对称转换拆分DL-p-HPG实验 | 第57-63页 |
| ·间歇不对称拆分 | 第57-62页 |
| ·反应温度影响 | 第57-58页 |
| ·过滤温度影响 | 第58-59页 |
| ·反应时间影响 | 第59-60页 |
| ·水含量影响 | 第60-61页 |
| ·催化剂影响 | 第61-62页 |
| ·连续不对称拆分 | 第62-63页 |
| ·酶促拆分DL-p-HPG实验 | 第63-72页 |
| ·N-乙酰-DL-对乙酰氧基苯甘氨酸的制备 | 第63-64页 |
| ·N-乙酰-DL-对羟基苯甘氨酸的制备 | 第64-65页 |
| ·N-乙酰-DL-对羟基苯甘氨酸的酶捉拆分 | 第65-69页 |
| ·酶量影晌 | 第65-67页 |
| ·保温时间影响 | 第67页 |
| ·反应温度影响 | 第67-68页 |
| ·底物浓度对酶促拆分的影响 | 第68-69页 |
| ·N-乙酰-D-对羟基苯甘氨酸的结晶 | 第69-70页 |
| ·D-对羟基苯甘氨酸的制备 | 第70-72页 |
| 第五章 结论与展望 | 第72-76页 |
| ·L-对羟基苯甘氨酸的消旋反应结论 | 第72页 |
| ·DL-对羟基苯甘氨酸拆分结论 | 第72-74页 |
| ·诱导结晶拆分 | 第72-73页 |
| ·不对称转换拆分 | 第73页 |
| ·酶促拆分 | 第73页 |
| ·三种拆分方法的比较 | 第73-74页 |
| ·存在问题与改进 | 第74页 |
| ·展望 | 第74-75页 |
| ·研究生期间其它研究工作 | 第75页 |
| ·发表论文 | 第75-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 附录一：诱导结晶产品D-p-HPG.p-TS红处光谱 | 第77-78页 |
| 附录二：不对称转换产品D-p-HPG.p-TS红处光谱 | 第78-79页 |
| 附录三：不对称转换产品D-p-HPG红处光谱 | 第79-80页 |
| 附录四：N-乙酰DL-对乙酰氧基苯甘氨酸红处光谱 | 第80-81页 |
| 附录五：N-乙酰-DL-对羟基苯甘氨酸红处光谱 | 第81-82页 |
| 附录六：N-乙酰-D-对羟基苯甘氨酸红处光谱 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-85页 |