| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 前言 | 第7-11页 |
| 材料和方法 | 第11-17页 |
| 1． 试验材料 | 第11页 |
| 2． 方法 | 第11-17页 |
| 2．1． Bt晶体杀虫蛋白抗原的提取及影响因素测定 | 第11-13页 |
| 2．1．1． 菌体培养 | 第11页 |
| 2．1．2． 孢晶混合物的提取 | 第11页 |
| 2．1．3． 伴孢晶体的提取 | 第11-12页 |
| 2．1．4． 晶体蛋白含量的测定 | 第12页 |
| 2．1．4．1． 280nm／260nm吸收差法测定 | 第12页 |
| 2．1．4．2． 考马斯亮蓝G-250染色法测定 | 第12页 |
| 2．1．5． 伴孢晶体蛋白成分的电泳分析 | 第12-13页 |
| 2．2． Bt杀虫蛋白抗体的制备 | 第13-14页 |
| 2．2．1． 注射用抗原的制备 | 第13页 |
| 2．2．2． 动物免疫和抗血清制备 | 第13-14页 |
| 2．2．3． 抗血清的分离和效价测定 | 第14页 |
| 2．2．4． 抗血清中免疫球蛋白（IgG）的提取 | 第14页 |
| 2．3． ELISA间接法技术体系建立 | 第14-17页 |
| 2．3．1． 工作溶液 | 第15页 |
| 2．3．2． 棉叶中Bt杀虫蛋白的提取 | 第15页 |
| 2．3．3． ELISA间接法操作程序 | 第15页 |
| 2．3．4． Dot-ELISA的检测操作程序 | 第15-16页 |
| 2．3．5． 特异抗体类型处理对检测OD值的影响 | 第16页 |
| 2．3．6． 检测灵敏度的研究 | 第16页 |
| 2．3．7． 棉花样本Bt杀虫蛋白含量测定 | 第16-17页 |
| 结果及分析 | 第17-36页 |
| 1． Bt晶体杀虫蛋白抗原的提取研究 | 第17-22页 |
| 1．1． 培养时间对Bt生长发育的影响 | 第17-18页 |
| 1．2． 培养时间对Bt晶体蛋白产量的影响 | 第18-19页 |
| 1．3． 提取方法对Bt晶体蛋白提取量的影响 | 第19-20页 |
| 1．4． 不同提取处理的蛋白质成分电泳分析 | 第20-22页 |
| 2． 抗体制备及提纯 | 第22-25页 |
| 2．1． 晶体杀虫蛋白含量测定 | 第22-23页 |
| 2．2． 免疫剂量对抗体产生的影响 | 第23-25页 |
| 2．3． 抗血清的IgG提取、含量和特异性测定 | 第25页 |
| 3． 检测方法研究 | 第25-36页 |
| 3．1． 特异抗体类型对光吸收值（OD）的影响 | 第25-27页 |
| 3．2． 检测灵敏度的测定 | 第27-31页 |
| 3．2．1． 用聚苯乙烯板进行ELISA间接法检测抗原的灵敏度 | 第27-29页 |
| 3．2．1．1． 采用IgG-HRP作为酶标抗体的检测灵敏度 | 第27-28页 |
| 3．2．1．2． 采用IgG-AP作为酶标抗体的检测灵敏度 | 第28-29页 |
| 3．2．2． Dot-ELISA间接法检测的灵敏度 | 第29-31页 |
| 3．2．2．1． 采用IgG-HRP酶标抗体的Dot-ELISA检测灵敏度 | 第30页 |
| 3．2．2．2． 采用IgG-AP作为酶标抗体的Dot-ELISA检测灵敏度 | 第30-31页 |
| 3．3． 棉花样本中Bt杀虫蛋白的检测 | 第31-36页 |
| 3．3．1． 用ELISA间接法检测棉花样本中的Bt杀虫晶体蛋白含量 | 第31-34页 |
| 3．3．1．1． 采用IgG-HRP检测棉叶样本的Bt杀虫蛋白含量 | 第31-32页 |
| 3．3．1．2． 采用IgG-AP检测棉叶样本的Bt杀虫蛋白含量 | 第32-34页 |
| 3．3．2 采用Dot-ELISA检测棉花样本中的Bt杀虫晶体蛋白含量 | 第34-36页 |
| 结论与讨论 | 第36-38页 |
| 致谢 | 第38-39页 |
| 英文摘要 | 第39-41页 |
| 参考文献 | 第41-43页 |
