| 摘要 | 第11-12页 |
| Abstract | 第12页 |
| 第一章 引言 | 第13-19页 |
| 1.1 多糖的简介 | 第13页 |
| 1.2 多糖的生物学功能 | 第13-14页 |
| 1.2.1 免疫调节功能 | 第13页 |
| 1.2.2 抗氧化功能 | 第13-14页 |
| 1.2.3 降脂功能 | 第14页 |
| 1.2.4 抗肿瘤作用 | 第14页 |
| 1.3 天然植物多糖降血糖研究进展 | 第14-16页 |
| 1.3.1 α-淀粉酶抑制剂降糖机理 | 第15页 |
| 1.3.2 天然产物α-淀粉酶抑制剂 | 第15-16页 |
| 1.3.3 植物多糖的应用 | 第16页 |
| 1.4 苜蓿多糖研究进展 | 第16-17页 |
| 1.5 选题的目的和意义 | 第17-18页 |
| 1.6 研究内容和技术路线 | 第18-19页 |
| 1.6.1 研究内容 | 第18页 |
| 1.6.2 技术路线 | 第18-19页 |
| 第二章 紫花苜蓿多糖的提取和分离 | 第19-30页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第19页 |
| 2.2 仪器和设备 | 第19页 |
| 2.3 试验方法 | 第19-20页 |
| 2.3.1 紫花苜蓿预处理 | 第19页 |
| 2.3.2 热水浸提法提取苜蓿多糖 | 第19-20页 |
| 2.3.3 碱法提取苜蓿多糖 | 第20页 |
| 2.4 碱法提取苜蓿多糖的单因素试验 | 第20-21页 |
| 2.4.1 提取温度对苜蓿多糖提取率的影响 | 第20页 |
| 2.4.2 提取时间对苜蓿多糖提取率的影响 | 第20页 |
| 2.4.3 碱浓度对苜蓿多糖提取率的影响 | 第20页 |
| 2.4.4 酶含量对苜蓿多糖提取率的影响 | 第20-21页 |
| 2.4.5 碱法提取苜蓿多糖的响应面试验 | 第21页 |
| 2.5 苜蓿多糖的测定 | 第21-22页 |
| 2.6 试验结果与分析 | 第22-28页 |
| 2.6.1 热水浸提法与碱法提取产率及溶解性的影响 | 第22页 |
| 2.6.2 提取温度对多糖提取率的影响 | 第22-23页 |
| 2.6.3 提取时间对多糖提取率的影响 | 第23页 |
| 2.6.4 碱浓度对多糖提取率的影响 | 第23-24页 |
| 2.6.5 酶含量对多糖提取率的影响 | 第24-25页 |
| 2.6.6 响应面分析 | 第25-28页 |
| 2.7 讨论 | 第28页 |
| 2.8 小结 | 第28-30页 |
| 第三章 苜蓿多糖的纯化及性质表征 | 第30-39页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第30-31页 |
| 3.1.1 试验原料 | 第30页 |
| 3.1.2 试验试剂 | 第30页 |
| 3.1.3 试验仪器 | 第30-31页 |
| 3.2 试验方法 | 第31-33页 |
| 3.2.1 苜蓿多糖脱色 | 第31页 |
| 3.2.2 苜蓿多糖除蛋白 | 第31页 |
| 3.2.3 苜蓿多糖的透析 | 第31-32页 |
| 3.2.4 离子交换柱层析 | 第32页 |
| 3.2.5 凝胶柱层析 | 第32-33页 |
| 3.2.6 苜蓿多糖分子量的测定 | 第33页 |
| 3.2.7 苜蓿多糖单糖组成测定 | 第33页 |
| 3.3 多糖含量的测定 | 第33-34页 |
| 3.3.1 抗氧化活性的测定 | 第33页 |
| 3.3.2 对羟基自由基测定 | 第33-34页 |
| 3.4 实验结果与分析 | 第34-37页 |
| 3.4.1 离子交换柱层析结果 | 第34-35页 |
| 3.4.2 凝胶柱层析结果 | 第35页 |
| 3.4.3 苜蓿多糖分子量测定结果 | 第35-36页 |
| 3.4.4 苜蓿多糖抗氧化活性 | 第36页 |
| 3.4.5 对羟基自由基清除作用 | 第36-37页 |
| 3.4.6 单糖组成分析结果 | 第37页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第37-38页 |
| 3.6 小结 | 第38-39页 |
| 第四章 苜蓿多糖降血糖活性的研究 | 第39-50页 |
| 4.1 材料与试剂 | 第39页 |
| 4.2 仪器与设备 | 第39页 |
| 4.3 试验方法 | 第39-44页 |
| 4.3.1 溶液的配置 | 第39-42页 |
| 4.3.1.1 DMEM(H)完全培养液(10%FBS) | 第39页 |
| 4.3.1.2 细胞冻存液配置 | 第39-40页 |
| 4.3.1.3 胰岛素浓储液配置 | 第40页 |
| 4.3.1.4 地塞米松(DEX)浓储液的配置 | 第40页 |
| 4.3.1.53 -异丁基-1-甲基黄嘌呤(IBMX)浓储液配置 | 第40-41页 |
| 4.3.1.6 诱导分化培养液一的配置 | 第41页 |
| 4.3.1.7 诱导分化培养液二的配置 | 第41页 |
| 4.3.1.8 油红O浓储液的配置 | 第41页 |
| 4.3.1.9 油红O工作液的配置 | 第41页 |
| 4.3.1.10 含苜蓿多糖的DMEM(H)完全培养液的配置 | 第41页 |
| 4.3.1.11 含二甲双胍的DMEM(H)完全培养液的配置 | 第41-42页 |
| 4.3.1.12 MTT溶液的配置 | 第42页 |
| 4.3.2 3T3-L1前脂肪细胞的预处理 | 第42-43页 |
| 4.3.3 3T3-L1前脂肪细胞诱导分化 | 第43页 |
| 4.3.4 油红O染色 | 第43页 |
| 4.3.5 胰岛素抵抗模型的建立 | 第43-44页 |
| 4.3.6 MTT试验 | 第44页 |
| 4.3.7 苜蓿多糖降糖活性组分的筛选 | 第44页 |
| 4.4 结果与分析 | 第44-48页 |
| 4.4.1 细胞诱导分化结果 | 第44-45页 |
| 4.4.2 油红O染色结果 | 第45页 |
| 4.4.3 胰岛素抵抗模型的建立 | 第45-46页 |
| 4.4.4 胰岛素抵抗模型的维持情况 | 第46页 |
| 4.4.5 MTT检测结果与分析 | 第46-47页 |
| 4.4.6 苜蓿多糖降糖活性组分的筛选 | 第47-48页 |
| 4.5 讨论 | 第48-49页 |
| 4.6 小结 | 第49-50页 |
| 第五章 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |
| 致谢 | 第55页 |
