| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 符号说明 | 第16-23页 |
| 1 文献综述 | 第23-39页 |
| 1.1 实验动物应激研究进展 | 第23-36页 |
| 1.1.1 应激后血液学、血清生化指标的评价 | 第24-25页 |
| 1.1.2 应激后氧化应激的评价 | 第25-29页 |
| 1.1.3 代谢组学概述 | 第29-30页 |
| 1.1.4 代谢组学的分析测试方法 | 第30-34页 |
| 1.1.5 基于NMR代谢组学分析技术的应用 | 第34-36页 |
| 1.2 目的意义 | 第36-38页 |
| 1.3 技术路线 | 第38-39页 |
| 2 运输应激对食蟹猴氧化应激及代谢组学的影响 | 第39-92页 |
| 2.1 运输应激对食蟹猴氧化应激的影响 | 第39-68页 |
| 2.1.1 材料与方法 | 第40-52页 |
| 2.1.1.1 仪器设备 | 第40页 |
| 2.1.1.2 动物 | 第40页 |
| 2.1.1.3 动物饲养环境 | 第40-41页 |
| 2.1.1.4 动物运输 | 第41-42页 |
| 2.1.1.5 动物福利 | 第42页 |
| 2.1.1.6 实验结束后动物处理 | 第42页 |
| 2.1.1.7 血液及血浆准备 | 第42-44页 |
| 2.1.1.8 氧化应激和抗氧化应激指标测定 | 第44-51页 |
| 2.1.1.9 统计分析 | 第51-52页 |
| 2.1.2 结果 | 第52-64页 |
| 2.1.2.1 氧化应激和抗氧化应激 | 第52-56页 |
| 2.1.2.2 血液学 | 第56-61页 |
| 2.1.2.3 血清生化 | 第61-64页 |
| 2.1.3 讨论 | 第64-68页 |
| 2.1.3.1 氧化应激和抗氧化应激 | 第64-67页 |
| 2.1.3.2 血液学和血清生化 | 第67-68页 |
| 2.1.4 小结 | 第68页 |
| 2.2 基于~1H NMR的食蟹猴运输应激血浆和尿液代谢组学研究 | 第68-90页 |
| 2.2.1 材料与方法 | 第69-73页 |
| 2.2.1.1 仪器设备 | 第69页 |
| 2.2.1.2 动物 | 第69-70页 |
| 2.2.1.3 动物饲养环境 | 第70页 |
| 2.2.1.4 动物运输 | 第70页 |
| 2.2.1.5 动物福利 | 第70页 |
| 2.2.1.6 实验结束后动物处理 | 第70页 |
| 2.2.1.7 血液采集 | 第70页 |
| 2.2.1.8 尿液收集 | 第70-71页 |
| 2.2.1.9 ~1H NMR法测定血浆和尿液 | 第71-72页 |
| 2.2.1.10 ~1H NMR数据分析 | 第72-73页 |
| 2.2.2 结果 | 第73-86页 |
| 2.2.2.1 血浆和尿液的~1H NMR谱 | 第73-81页 |
| 2.2.2.2 血浆和尿液的OPLS-DA分析 | 第81-85页 |
| 2.2.2.3 运输应激代谢网络图 | 第85-86页 |
| 2.2.3 讨论 | 第86-89页 |
| 2.2.3.1 能量代谢的变化 | 第87页 |
| 2.2.3.2 脂类代谢的变化 | 第87-88页 |
| 2.2.3.3 氨基酸代谢的变化 | 第88页 |
| 2.2.3.4 肌酸代谢的变化 | 第88-89页 |
| 2.2.3.5 肠道微生物代谢的变化 | 第89页 |
| 2.2.4 小结 | 第89-90页 |
| 2.3 不足之处 | 第90-92页 |
| 2.3.1 清醒动物采血 | 第90页 |
| 2.3.2 样本量 | 第90页 |
| 2.3.3 运输前血样 | 第90-91页 |
| 2.3.4 运输前尿样 | 第91-92页 |
| 3 保定应激对食蟹猴代谢组学的影响 | 第92-123页 |
| 3.1 氯胺酮对食蟹猴血浆和尿液代谢组学及血液学的影响 | 第92-111页 |
| 3.1.1 材料与方法 | 第93-94页 |
| 3.1.1.1 仪器设备 | 第93页 |
| 3.1.1.2 动物 | 第93页 |
| 3.1.1.3 动物饲养环境 | 第93页 |
| 3.1.1.4 动物分组及处理 | 第93-94页 |
| 3.1.1.5 血液采集 | 第94页 |
| 3.1.1.6 尿液收集 | 第94页 |
| 3.1.1.7 实验结束动物处理 | 第94页 |
| 3.1.1.8 动物福利 | 第94页 |
| 3.1.1.9 ~1H NMR法测定血浆和尿液 | 第94页 |
| 3.1.1.10 ~1H NMR数据分析 | 第94页 |
| 3.1.1.11 血液学指标测定 | 第94页 |
| 3.1.2 结果 | 第94-108页 |
| 3.1.2.1 血浆和尿液的~1H NMR谱 | 第95-97页 |
| 3.1.2.2 血浆和尿液的OPLS-DA分析 | 第97-100页 |
| 3.1.2.3 血液学 | 第100-108页 |
| 3.1.3 讨论 | 第108-111页 |
| 3.1.4 小结 | 第111页 |
| 3.2 猴椅保定应激对食蟹猴血浆和尿液代谢组学的影响 | 第111-123页 |
| 3.2.1 材料与方法 | 第112-113页 |
| 3.2.1.1 仪器设备 | 第112页 |
| 3.2.1.2 动物与保定 | 第112页 |
| 3.2.1.3 动物饲养环境 | 第112-113页 |
| 3.2.1.4 血液采集 | 第113页 |
| 3.2.1.5 尿液收集 | 第113页 |
| 3.2.1.6 动物福利 | 第113页 |
| 3.2.1.7 ~1H NMR法测定血浆和尿液 | 第113页 |
| 3.2.1.8 ~1H NMR数据分析 | 第113页 |
| 3.2.2 结果 | 第113-119页 |
| 3.2.2.1 血浆和尿液的~1H NMR谱 | 第113-115页 |
| 3.2.2.2 尿液和血浆的OPLS-DA分析 | 第115-118页 |
| 3.2.2.3 猴椅保定应激代谢网络图 | 第118-119页 |
| 3.2.3 讨论 | 第119-121页 |
| 3.2.4 小结 | 第121-123页 |
| 4 基于~1H NMR的食蟹猴禁食应激代谢组学研究 | 第123-139页 |
| 4.1 材料与方法 | 第124-125页 |
| 4.1.1 仪器设备 | 第124页 |
| 4.1.2 动物及处理 | 第124页 |
| 4.1.3 动物饲养环境 | 第124页 |
| 4.1.4 代谢组学血浆样品处理 | 第124页 |
| 4.1.5 血液学指标测定 | 第124-125页 |
| 4.1.6 血清生化指标测定 | 第125页 |
| 4.1.7 尿液收集 | 第125页 |
| 4.1.8 动物福利 | 第125页 |
| 4.1.9 ~1H NMR法测定血浆和尿液 | 第125页 |
| 4.1.10 ~1H NMR数据分析 | 第125页 |
| 4.2 结果 | 第125-135页 |
| 4.2.1 血浆和尿液的~1H NMR谱 | 第125-128页 |
| 4.2.2 血浆和尿液的OPLS-DA分析 | 第128-131页 |
| 4.2.3 禁食代谢网络图 | 第131页 |
| 4.2.4 血液学 | 第131-133页 |
| 4.2.5 血清生化 | 第133-135页 |
| 4.3 讨论 | 第135-138页 |
| 4.4 小结 | 第138-139页 |
| 全文总结及创新点 | 第139-141页 |
| 参考文献 | 第141-163页 |
| 致谢 | 第163-165页 |
| 攻读博士学位期间发表和准备中的学术论文 | 第165-166页 |
