| 论文创新点 | 第5-9页 |
| 摘要 | 第9-10页 |
| ABSTRACT | 第10页 |
| 第一章 前言 | 第12-34页 |
| 1 白纹伊蚊的相关介绍 | 第12-21页 |
| 1.1 白纹伊蚊的生命周期和行为特点 | 第12-14页 |
| 1.2 白纹伊蚊的地理分布 | 第14-15页 |
| 1.3 经白纹伊蚊传播的蚊媒病毒 | 第15-17页 |
| 1.4 白纹伊蚊对人类健康造成的严重危害 | 第17-18页 |
| 1.5 病毒是如何感染白纹伊蚊的 | 第18-19页 |
| 1.6 白纹伊蚊如何抵抗病毒侵染 | 第19-21页 |
| 2 细胞凋亡的研究概况 | 第21-33页 |
| 2.1 细胞凋亡概念 | 第21-22页 |
| 2.2 细胞凋亡通路在哺乳动物中的研究概况 | 第22-26页 |
| 2.3 果蝇中的细胞凋亡 | 第26-30页 |
| 2.4 埃及伊蚊中的细胞凋亡 | 第30-33页 |
| 3 研究意义和内容 | 第33-34页 |
| 第二章 研究材料与研究方法 | 第34-55页 |
| 1 实验仪器、试剂及生物材料 | 第34-36页 |
| 1.1 实验仪器 | 第34-35页 |
| 1.2 实验试剂 | 第35-36页 |
| 1.3 载体,菌种和细胞 | 第36页 |
| 2 分子克隆相关技术 | 第36-47页 |
| 2.1 鉴定白纹伊蚊中caspase基因及构建相关质粒 | 第36-44页 |
| 2.2 构建白纹伊蚊中新caspase基因的点突变 | 第44-46页 |
| 2.3 荧光定量PCR | 第46-47页 |
| 3 蛋白质的表达纯化及检验技术 | 第47-52页 |
| 3.1 caspases表达和纯化 | 第47-48页 |
| 3.2 蛋白检测技术 | 第48-49页 |
| 3.3 蛋白质透析技术 | 第49页 |
| 3.4 caspase活性测定和蛋白孵育切割实验 | 第49-51页 |
| 3.5 制作抗体 | 第51-52页 |
| 4 细胞实验技术 | 第52-55页 |
| 4.1 白纹伊蚊的培养 | 第52页 |
| 4.2 细胞传代培养 | 第52页 |
| 4.3 冻存与复苏细胞 | 第52-53页 |
| 4.4 脂质体转染细胞 | 第53-54页 |
| 4.5 细胞样品制备 | 第54-55页 |
| 第三章 实验结果与讨论 | 第55-92页 |
| 1 研究背景 | 第55-57页 |
| 2 鉴定AaCASPS7：白纹伊蚊中效应caspase | 第57-67页 |
| 2.1 白纹伊蚊中AaCASPS7序列分析及比对 | 第57-59页 |
| 2.2 白纹伊蚊AaCASPS7进化树分析 | 第59-60页 |
| 2.3 Aacasps7在白纹伊蚊整个生命周期持续表达 | 第60-61页 |
| 2.4 AaCASPS7在体外表达纯化可以发生自切割,并且偏好效应caspase底物 | 第61-62页 |
| 2.5 AaCASPS7在D36,D195,D207处发生切割 | 第62-65页 |
| 2.6 AaCASPS7在C6/36细胞内高表达可引起细胞凋亡 | 第65-67页 |
| 3 鉴定AaDronc:白纹伊蚊中一个起始caspase | 第67-76页 |
| 3.1 白纹伊蚊中AaDronc序列分析及比对 | 第67页 |
| 3.2 白纹伊蚊AaDronc进化树分析 | 第67-68页 |
| 3.3 Aadronc在白纹伊蚊整个生命周期持续表达 | 第68-69页 |
| 3.4 AaDronc在体外表达可以发生自切割,并且偏好起始caspase底物 | 第69-71页 |
| 3.5 重组AaDronc可以在体外切割AaCASPS7 | 第71-72页 |
| 3.6 AaDronc可以诱导C6/36细胞凋亡 | 第72-74页 |
| 3.7 细胞内共转染AaDronc和AaCASPS7促进细胞凋亡发生 | 第74-76页 |
| 4 鉴定AaCASPS8,AaCASPS19和AaCASPS20及对它们生化特性及功能进行初步探索 | 第76-89页 |
| 4.1 鉴定AaCASPS8及对其生化特性和功能初步探索 | 第76-81页 |
| 4.2 鉴定AaCASPS19及对其生化特性初步探索 | 第81-85页 |
| 4.3 鉴定AaCASPS20及对其生化特性的初步探索 | 第85-89页 |
| 5 总结与展望 | 第89-92页 |
| 参考文献 | 第92-105页 |
| 攻博期间发表的科研成果目录 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106-107页 |
