| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 引言 | 第12-17页 |
| 材料与方法 | 第17-36页 |
| 1.材料 | 第17-18页 |
| 1.1 实验试剂 | 第17页 |
| 1.2 实验仪器 | 第17-18页 |
| 2 方法 | 第18-36页 |
| 2.1 标本收集 | 第18-21页 |
| 2.2 观察指标 | 第21-22页 |
| 2.3 引物设计和合成 | 第22页 |
| 2.4 组织RNA提取及鉴定 | 第22-23页 |
| 2.5 细胞RNA提取 | 第23页 |
| 2.6 细胞核质RNA分离提取实验 | 第23-25页 |
| 2.7 RT-qPCR检测CCAT1mRNA表达水平 | 第25-26页 |
| 2.8 细胞培养?复苏、传代与冻存 | 第26-27页 |
| 2.9 常用细胞实验溶液配制 | 第27页 |
| 2.10 构建CCAT1基因真核表达载体 | 第27-28页 |
| 2.11 CCAT1转染实验 | 第28-29页 |
| 2.12 细胞功能学实验 | 第29页 |
| 2.13 RNA结合miRNA免疫沉淀 | 第29-32页 |
| 2.14 WesternBlot检测 | 第32-34页 |
| 2.15 荧光素酶报告实验 | 第34-35页 |
| 2.16 统计学方法 | 第35-36页 |
| 结果 | 第36-50页 |
| 1.胃癌组织和正常组织中CCAT1表达 | 第36-37页 |
| 2.CCAT1表达高低与胃癌临床病理之间的关系 | 第37-38页 |
| 3.CCAT1表达与胃癌患者预后的相关性 | 第38页 |
| 4.CCAT1在胃癌细胞中表达 | 第38-39页 |
| 5.CCAT1在胃癌细胞中亚细胞分布 | 第39-40页 |
| 6.GC血清中CCAT1的表达水平及其早诊意义 | 第40-41页 |
| 7.CCAT1过表达/敲减效果 | 第41页 |
| 8.CCAT1可体外促进GC细胞增殖 | 第41-42页 |
| 9.CCAT1可体外促进GC细胞侵袭迁移 | 第42页 |
| 10.胃癌中可与CCAT1结合的miRNA的初步筛选 | 第42-44页 |
| 11.胃癌细胞中CCAT1对预测靶miRNA的作用检测 | 第44-45页 |
| 12.胃癌细胞中CCAT1与预测靶miRNA的结合作用检测 | 第45-46页 |
| 13.荧光素酶报告实验检测胃癌细胞中CCAT1与miR-490-3p的结合 | 第46-47页 |
| 14.胃癌细胞中miR-490-3p的表达与CCAT1的相关性 | 第47页 |
| 15.CCAT1可能作为ceRNA通过调节miR-490-3p/SMARCD1信号发挥致癌功能.. | 第47-50页 |
| 讨论 | 第50-54页 |
| 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-67页 |
| 综述 | 第67-96页 |
| 参考文献 | 第80-96页 |
| 主要缩略词表 | 第96-98页 |
| 攻读学位期间本人出版或公开发表的论著、论文 | 第98-99页 |
| 致谢 | 第99-100页 |
