| 缩略语表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 文献回顾 | 第15-23页 |
| 实验一 顶底回外毛细胞的分离及捕获 | 第23-29页 |
| 1 材料 | 第23-24页 |
| 1.1 实验材料 | 第23页 |
| 1.2 主要试剂 | 第23页 |
| 1.3 主要仪器 | 第23-24页 |
| 2 方法 | 第24-25页 |
| 2.1 顶底回外毛细胞的分离 | 第24-25页 |
| 2.2 外毛细胞的捕获 | 第25页 |
| 3 结果 | 第25-28页 |
| 3.1 不同天数的SD大鼠外毛细胞产量和形态 | 第25-26页 |
| 3.2 P9天SD大鼠外毛细胞的特点 | 第26页 |
| 3.3 P9天与P28天SD大鼠分离外毛细胞的形态学对比 | 第26-27页 |
| 3.4 P9天SD大鼠顶回和底回基底膜分离外毛细胞的产量及特征 | 第27页 |
| 3.5 外毛细胞的捕获 | 第27-28页 |
| 4 讨论 | 第28-29页 |
| 实验二 顶底回外毛细胞转录组测序及生物信息学分析 | 第29-39页 |
| 1 材料 | 第29-30页 |
| 1.1 实验材料 | 第29页 |
| 1.2 主要试剂 | 第29页 |
| 1.3 主要仪器 | 第29-30页 |
| 2 方法 | 第30-31页 |
| 2.1 收集顶回及底回外毛细胞样本 | 第30页 |
| 2.2 转录测序步骤 | 第30-31页 |
| 2.3 测序结果的统计学分析 | 第31页 |
| 3 结果 | 第31-37页 |
| 3.1 顶回外毛细胞和底回外毛细胞转录组差异表达基因 | 第31-34页 |
| 3.2 顶回外毛细胞和底回外毛细胞表达水平最高的200个基因 | 第34-35页 |
| 3.3 特定表达在顶回和底回外毛细胞中表达水平最高的200个基因 | 第35-36页 |
| 3.4 顶回和底回外毛细胞中耳聋相关基因表达水平比较 | 第36-37页 |
| 3.5 顶回外毛细胞和底回外毛细胞差异表达基因参与的生物学功能分析 | 第37页 |
| 4 讨论 | 第37-39页 |
| 实验三 NOX2参与顶底回外毛细胞易损性差异的研究 | 第39-57页 |
| 1 材料 | 第39-40页 |
| 1.1 实验对象 | 第39页 |
| 1.2 实验试剂 | 第39-40页 |
| 1.3 实验仪器 | 第40页 |
| 2 方法 | 第40-45页 |
| 2.1 实验分组 | 第40-41页 |
| 2.2 大鼠耳蜗的样本取材 | 第41页 |
| 2.3 ABR测听 | 第41页 |
| 2.4 免疫荧光染色 | 第41-42页 |
| 2.5 耳蜗器官培养 | 第42-43页 |
| 2.6 新霉素处理时间及浓度 | 第43页 |
| 2.7 DHE染色 | 第43页 |
| 2.8 TUNEL染色 | 第43页 |
| 2.9 Western Blot | 第43-45页 |
| 2.10 统计学分析 | 第45页 |
| 3 结果 | 第45-55页 |
| 3.1 NOX2在耳蜗外毛细胞中的表达 | 第45-46页 |
| 3.2 NOX2在新霉素的诱导下在顶底回外毛细胞差异性的上调 | 第46-48页 |
| 3.3 体内抑制NOX2对新霉素诱导的外毛细胞损伤的保护作用 | 第48-50页 |
| 3.4 体外抑制NOX2能够保护新霉素诱导的外毛细胞损伤 | 第50-51页 |
| 3.5 NOX2来源的活性氧参与新霉素诱导的外毛细胞的损伤 | 第51-52页 |
| 3.6 体外抑制NOX2减少cleaved caspase-3阳性细胞数量 | 第52-54页 |
| 3.7 体外抑制NOX2减少TUNEL阳性细胞数量 | 第54-55页 |
| 4 讨论 | 第55-57页 |
| 小结 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 个人简历和研究成果 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
