| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 引言 | 第14-26页 |
| 0.1 概述 | 第14-15页 |
| 0.2 植物多糖的研究概况 | 第15-23页 |
| 0.2.1 植物活性多糖的提取技术 | 第15-18页 |
| 0.2.1.1 溶剂浸提法 | 第15-16页 |
| 0.2.1.2 酶解提取法 | 第16页 |
| 0.2.1.3 超声波提取法 | 第16-17页 |
| 0.2.1.4 微波提取法 | 第17-18页 |
| 0.2.1.5 超高压提取法 | 第18页 |
| 0.2.2 植物活性多糖的分离纯化 | 第18-21页 |
| 0.2.2.1 杂质的去除 | 第18-20页 |
| 0.2.2.2 分级纯化 | 第20-21页 |
| 0.2.3 植物多糖的分析与生物活性研究 | 第21-22页 |
| 0.2.3.1 多糖含量测定 | 第21页 |
| 0.2.3.2 多糖纯度测定 | 第21-22页 |
| 0.2.4 多糖的免疫调节活性研究 | 第22-23页 |
| 0.3 茄枝多糖的研究概况 | 第23页 |
| 0.4 本课题研究的目的,意义及主要研究内容 | 第23-26页 |
| 0.4.1 目的及意义 | 第23-24页 |
| 0.4.2 研究内容 | 第24-26页 |
| 0.4.2.1 茄枝多糖提取工艺优化 | 第24页 |
| 0.4.2.2茄枝多糖分离纯化技术 | 第24页 |
| 0.4.2.3 茄枝多糖的理化性质 | 第24页 |
| 0.4.2.4 茄枝多糖的体外抗氧化活性 | 第24-25页 |
| 0.4.2.5 茄枝多糖的体内抗氧化活性 | 第25页 |
| 0.4.2.6 茄枝多糖对免疫抑制小鼠免疫功能的影响 | 第25-26页 |
| 第一章 茄枝多糖提取工艺研究 | 第26-35页 |
| 1.1 材料、试剂与仪器 | 第26-27页 |
| 1.1.1 材料与试剂 | 第26-27页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第27页 |
| 1.2 方法 | 第27-29页 |
| 1.2.1 茄枝多糖最大吸收波长的确定 | 第27页 |
| 1.2.2 多糖含量的测定 | 第27-29页 |
| 1.2.2.1 葡萄糖标准曲线绘制 | 第27-28页 |
| 1.2.2.2 样品总糖含量测定 | 第28页 |
| 1.2.2.3 多糖换算系数测定 | 第28页 |
| 1.2.2.4 多糖含量测定 | 第28-29页 |
| 1.2.3 茄枝多糖提取工艺研究 | 第29页 |
| 1.2.4 茄枝多糖提取正交试验研究 | 第29页 |
| 1.3 结果与讨论 | 第29-33页 |
| 1.3.1 茄枝多糖最大吸收波长的确定 | 第29-30页 |
| 1.3.2 葡萄糖标准曲线绘制 | 第30-31页 |
| 1.3.3 水提茄枝多糖单因素 | 第31-32页 |
| 1.3.4 水提正交试验结果 | 第32-33页 |
| 1.4 本章小结 | 第33-35页 |
| 第二章 茄枝多糖的分离纯化 | 第35-51页 |
| 2.1 材料、试剂与仪器 | 第36页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第36页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第36页 |
| 2.2 方法 | 第36-39页 |
| 2.2.1 茄枝多糖分离纯化的路线 | 第36页 |
| 2.2.2 蛋白质含量的测定方法 | 第36-37页 |
| 2.2.2.1 标准蛋白溶液配制 | 第36-37页 |
| 2.2.2.2 考马斯亮蓝试剂的配制 | 第37页 |
| 2.2.2.3 蛋白质标准曲线的绘制 | 第37页 |
| 2.2.2.4 样品蛋白质含量的测定 | 第37页 |
| 2.2.3 三氯乙酸法脱蛋白 | 第37页 |
| 2.2.4 Sevag法脱蛋白 | 第37-38页 |
| 2.2.5 木瓜蛋白酶脱蛋白 | 第38页 |
| 2.2.6 木瓜蛋白酶与三氯乙酸结合法脱蛋白 | 第38页 |
| 2.2.7 不同脱蛋白方法的比较 | 第38页 |
| 2.2.8 茄枝多糖分离柱层析 | 第38-39页 |
| 2.2.8.1 DEAE-D22纤维素柱层析 | 第38-39页 |
| 2.2.8.2 Sephadex G-100柱层析分离 | 第39页 |
| 2.3 结果与分析 | 第39-51页 |
| 2.3.1 蛋白质标准曲线 | 第39-40页 |
| 2.3.2 三氯乙酸法脱蛋白 | 第40-41页 |
| 2.3.3 Sevag法除蛋白 | 第41-42页 |
| 2.3.4 Sevag法除蛋白正交试验 | 第42-43页 |
| 2.3.5 酶法除蛋白单因素试验 | 第43-45页 |
| 2.3.6 酶解法除蛋白正交实验 | 第45-46页 |
| 2.3.7 酶法与Sevag法结合除蛋白 | 第46-47页 |
| 2.3.8 酶法与三氯乙酸法结合除蛋白 | 第47页 |
| 2.3.9 四种脱蛋白方法效果比较 | 第47-48页 |
| 2.3.10 DEAE-D22纤维素分离 | 第48-49页 |
| 2.3.11 Sephadex G-100分离 | 第49-51页 |
| 第三章 茄枝多糖理化性质研究与多糖成分分析 | 第51-59页 |
| 3.1 材料、试剂与仪器 | 第52-53页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第52-53页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第53页 |
| 3.2 方法 | 第53-55页 |
| 3.2.1 茄枝多糖理化性质 | 第53-54页 |
| 3.2.2 茄枝多糖TLC分析 | 第54页 |
| 3.2.3 茄枝多糖HPLC分析 | 第54-55页 |
| 3.2.3.1 单糖标准品配制与样品柱前衍生 | 第54-55页 |
| 3.2.3.2 茄枝多糖与单糖对照品的HPLC分析 | 第55页 |
| 3.3 结果与分析 | 第55-57页 |
| 3.3.1 茄枝多糖理化性质实验结果 | 第55-56页 |
| 3.3.2 茄枝多糖TLC分析 | 第56页 |
| 3.3.3 茄枝多糖HPLC分析 | 第56-57页 |
| 3.4 本章小结 | 第57-59页 |
| 第四章 茄枝多糖抗氧化和免疫活性研究 | 第59-68页 |
| 4.1 材料与方法 | 第60-65页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第60页 |
| 4.1.2 实验动物 | 第60页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第60-61页 |
| 4.1.4 茄枝多糖体外抗氧化 | 第61-63页 |
| 4.1.4.1 茄枝多糖对羟基自由基·OH清除能力的测定 | 第61页 |
| 4.1.4.2 茄枝多糖对超氧阴离子自由基O_2~-清除能力的测定 | 第61-63页 |
| 4.1.5 茄枝多糖体内抗氧化 | 第63-64页 |
| 4.1.5.1 总超氧化物歧化酶(T-SOD)活力测定 | 第63-64页 |
| 4.1.5.2 丙二醛(MDA)含量测定 | 第64页 |
| 4.1.6 茄枝多糖对小鼠脾淋巴细胞转化的影响 | 第64-65页 |
| 4.2 结果与分析 | 第65-67页 |
| 4.2.1 茄枝多糖对羟基自由基(·OH)清除能力的测定 | 第65-66页 |
| 4.2.2 茄枝多糖对超氧阴离子自由基O_2~-清除能力的测定 | 第66页 |
| 4.2.3 茄枝多糖对血清中SOD、MDA水平的影响 | 第66-67页 |
| 4.2.4 茄枝多糖对小鼠脾淋巴细胞增殖能力的影响 | 第67页 |
| 4.3 本章小结 | 第67-68页 |
| 结论 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-74页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文及参加科研情况 | 第74页 |
