| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩略词 | 第8-12页 |
| 1 前言 | 第12-24页 |
| 1.1 表观遗传学概述 | 第12-19页 |
| 1.1.1 DNA甲基化 | 第13-14页 |
| 1.1.2 非编码RNA | 第14页 |
| 1.1.3 染色质重塑 | 第14-15页 |
| 1.1.4 组蛋白修饰 | 第15-16页 |
| 1.1.5 组蛋白赖氨酸甲基化修饰研究进展 | 第16-19页 |
| 1.2 ABA相关概述 | 第19-22页 |
| 1.2.1 ABA信号传导 | 第19-22页 |
| 1.3 本研究的目的与意义 | 第22-24页 |
| 2 材料和方法 | 第24-40页 |
| 2.1 实验仪器及试剂 | 第24-26页 |
| 2.1.1 常用实验仪器 | 第24-25页 |
| 2.1.2 常用实验试剂 | 第25-26页 |
| 2.2 实验材料 | 第26页 |
| 2.2.1 植物材料 | 第26页 |
| 2.2.2 载体和菌株 | 第26页 |
| 2.3 常用实验培养基及溶液的配制 | 第26-28页 |
| 2.3.1 常用实验培养基的配制 | 第26-27页 |
| 2.3.2 常用实验抗生素的配制 | 第27页 |
| 2.3.3 常用实验溶液的配制 | 第27-28页 |
| 2.4 引物合成和DNA测序 | 第28-30页 |
| 2.4.1 生物学软件及网站 | 第28-29页 |
| 2.4.2 实验所用的引物序列 | 第29-30页 |
| 2.5 实验方法 | 第30-40页 |
| 2.5.1 拟南芥的培养 | 第30页 |
| 2.5.2 拟南芥基因组DNA的提取 | 第30页 |
| 2.5.3 拟南芥总RNA的提取 | 第30-31页 |
| 2.5.4 拟南芥RNA反转录制备c DNA | 第31页 |
| 2.5.5 q RT-PCR检测基因的相对表达量 | 第31-32页 |
| 2.5.6 重组载体的构建 | 第32-34页 |
| 2.5.7 拟南芥超表达植株的获取 | 第34-36页 |
| 2.5.8 植物总蛋白的提取和检测 | 第36-37页 |
| 2.5.9 GUS染色 | 第37-38页 |
| 2.5.10 拟南芥材料的胁迫处理 | 第38页 |
| 2.5.11 气孔开度实验 | 第38-39页 |
| 2.5.12 拟南芥花器官观察 | 第39-40页 |
| 3 结果与分析 | 第40-56页 |
| 3.1 组蛋白H3进化树分析 | 第40-41页 |
| 3.2 HTR5组织表达模式分析 | 第41-42页 |
| 3.3 突变体材料的创制及表型分析 | 第42-46页 |
| 3.3.1 HTR5基因的扩增和重组载体的构建 | 第42-44页 |
| 3.3.2 超表达材料鉴定和表型分析 | 第44-46页 |
| 3.4 组蛋白H3甲基化影响植株花粉发育 | 第46-47页 |
| 3.5 组蛋白H3K4甲基化分析 | 第47-48页 |
| 3.6 突变体材料对ABA胁迫敏感 | 第48-53页 |
| 3.6.1 不同胁迫处理下种子萌发实验 | 第48-51页 |
| 3.6.2 ABA影响突变体植株根发育 | 第51-52页 |
| 3.6.3 ABA影响超表达植株的气孔运动 | 第52-53页 |
| 3.7 组蛋白H3K4的甲基化影响ABA合成和信号关键基因表达 | 第53-56页 |
| 4 讨论 | 第56-58页 |
| 4.1 组蛋白H3.3K4M抑制植物的生长发育 | 第56页 |
| 4.2 超表达植株对ABA敏感 | 第56-58页 |
| 5 结论 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-68页 |
| 致谢 | 第68-70页 |