蓖麻遗传图谱构建及单雌性状QTL的定位分析
| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 1 文献综述 | 第8-18页 |
| 1.1 遗传标记种类、原理和应用 | 第9-11页 |
| 1.1.1 第一代分子标记技术 | 第9页 |
| 1.1.2 第二代分子标记技术 | 第9-10页 |
| 1.1.3 第三代分子标记技术 | 第10-11页 |
| 1.2 蓖麻中SSR分子标记开发情况 | 第11-12页 |
| 1.3 遗传图谱构建 | 第12-13页 |
| 1.3.1 作图亲本的选择 | 第12页 |
| 1.3.2 分离群体及群体大小 | 第12-13页 |
| 1.3.3 分子标记和作图软件的选用 | 第13页 |
| 1.4 数量性状(QTL)定位 | 第13-14页 |
| 1.4.1 QTL定位原理和方法 | 第13-14页 |
| 1.4.2 QTL定位软件 | 第14页 |
| 1.5 单雌性状研究进展 | 第14-16页 |
| 1.5.1 作物雄性不育研究 | 第14页 |
| 1.5.2 蓖麻杂交育种现状 | 第14-15页 |
| 1.5.3 蓖麻单雌性状遗传规律 | 第15页 |
| 1.5.4 蓖麻性型分子机制研究 | 第15页 |
| 1.5.5 其它植物单雌性状研究 | 第15-16页 |
| 1.6 本研究的目的意义 | 第16-17页 |
| 1.7 技术路线图 | 第17-18页 |
| 2 材料和方法 | 第18-25页 |
| 2.1 试验材料及种植 | 第18-19页 |
| 2.2 仪器和试剂 | 第19页 |
| 2.2.1 实验主要仪器 | 第19页 |
| 2.2.2 主要试剂来源 | 第19页 |
| 2.3 SSR标记开发 | 第19页 |
| 2.4 试验方法 | 第19-23页 |
| 2.4.1 蓖麻基因组DNA的提取、纯化和检测 | 第19-20页 |
| 2.4.2 PCR反应和扩增体系 | 第20-21页 |
| 2.4.3 聚丙烯酰胺凝胶制备 | 第21页 |
| 2.4.4 PCR扩增产物的电泳检测 | 第21-22页 |
| 2.4.5 快速银染及显影 | 第22页 |
| 2.4.6 数据统计方法 | 第22-23页 |
| 2.5 性状统计调查 | 第23-24页 |
| 2.6 图谱构建及QTL定位分析方法 | 第24-25页 |
| 2.6.1 遗传图谱构建 | 第24页 |
| 2.6.2 QTL定位 | 第24-25页 |
| 3 结果与分析 | 第25-36页 |
| 3.1 SSR标记开发 | 第25-28页 |
| 3.2 蓖麻基因组DNA提取 | 第28页 |
| 3.3 表型调查与分析 | 第28-29页 |
| 3.4 遗传图谱构建 | 第29-33页 |
| 3.4.1 多态性引物的筛选 | 第29-30页 |
| 3.4.2 蓖麻遗传图谱 | 第30-33页 |
| 3.5 QTL定位分析 | 第33-36页 |
| 3.5.1 蓖麻单雌性状QTL定位 | 第33-35页 |
| 3.5.2 两群体定位结果比较 | 第35-36页 |
| 4 讨论 | 第36-38页 |
| 4.1 本试验材料的创新性 | 第36页 |
| 4.2 SSR标记开发 | 第36页 |
| 4.3 遗传标记 | 第36-37页 |
| 4.4 遗传图谱 | 第37页 |
| 4.5 QTL定位 | 第37-38页 |
| 5 全文结论 | 第38-39页 |
| 5.1 SSR引物开发 | 第38页 |
| 5.2 蓖麻遗传图谱 | 第38页 |
| 5.3 QTL定位结果 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-49页 |
| 附录 | 第49-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 作者简介 | 第61-62页 |
| 导师简介 | 第62页 |
