| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第11-13页 |
| 第1章 实验研究 | 第13-50页 |
| 1.1 材料与方法 | 第13-26页 |
| 1.1.1 细胞系 | 第13页 |
| 1.1.2 主要试剂和仪器 | 第13-15页 |
| 1.1.3 常用实验试剂和溶液的配制 | 第15-16页 |
| 1.1.4 细胞复苏、传代、冻存 | 第16-17页 |
| 1.1.5 MTT法选取A23187作用浓度、时间及ALLN浓度 | 第17-18页 |
| 1.1.6 实验分组及处理 | 第18-19页 |
| 1.1.7 流式细胞仪检测HSC周期 | 第19页 |
| 1.1.8 ELISA试剂盒检测calpain-2活性 | 第19-20页 |
| 1.1.9 透视电子显微镜观察HSC超微结构的改变 | 第20页 |
| 1.1.10 Hoechst染色观察细胞凋亡 | 第20-21页 |
| 1.1.11 AnnexinV-FITC&PI双染法检测细胞凋亡 | 第21页 |
| 1.1.12 激光共聚焦显微镜检测各组细胞Ca~(2+)浓度 | 第21-22页 |
| 1.1.13 实时定量PCR检测HSC内GRP78、Calpain-2、Caspase-12mRNA表达情况 | 第22-23页 |
| 1.1.14 免疫组织化学法检测I型胶原 | 第23-24页 |
| 1.1.15 WesternBlot检测Caspase-9、Caspase-12、Caspase-3、GRP78、Calpain-2蛋白表达 | 第24-26页 |
| 1.1.16 统计学分析 | 第26页 |
| 1.2 实验结果 | 第26-40页 |
| 1.2.1 药物的作用时间及浓度筛选结果 | 第26-28页 |
| 1.2.2 不同处理组细胞增殖情况的改变 | 第28页 |
| 1.2.3 细胞周期的改变 | 第28-30页 |
| 1.2.4 透视电子显微镜观察HSC形态变化 | 第30页 |
| 1.2.5 各组calpain-2活性变化 | 第30-31页 |
| 1.2.6 各组HSC凋亡情况 | 第31-33页 |
| 1.2.7 各组Ca~(2+)浓度的变化 | 第33-34页 |
| 1.2.8 实时定量PCR方法测GRP78、calpain-2、caspase-12信号分子mRNA的变化 | 第34-35页 |
| 1.2.9 免疫组织细胞化学法检测I型胶原的变化 | 第35-36页 |
| 1.2.10 WesternBlot方法检测HSC内GRP78、Calpain-2、Caspase-12、Caspase-3、Caspase-9蛋白表达的变化 | 第36-40页 |
| 1.3 讨论 | 第40-45页 |
| 1.3.1 细胞增殖及细胞周期的改变 | 第41-42页 |
| 1.3.2 细胞凋亡变化情况 | 第42页 |
| 1.3.3 细胞Ca~(2+)浓度的变化情况 | 第42-43页 |
| 1.3.4 细胞Calpain-2变化情况 | 第43页 |
| 1.3.5 ERS标志性因子GRP78表达 | 第43-44页 |
| 1.3.6 ERS通路中促凋亡因子Caspase-12、Caspase-9、Caspase-3表达 | 第44-45页 |
| 1.3.7 I型胶原蛋白的表达 | 第45页 |
| 1.4 结论 | 第45页 |
| 参考文献 | 第45-50页 |
| 第2章 综述 | 第50-61页 |
| 2.1 肝星状细胞凋亡信号转导通路 | 第50-54页 |
| 2.1.1 线粒体途径 | 第51页 |
| 2.1.2 死亡受体途径 | 第51页 |
| 2.1.3 内质网应激途径 | 第51-54页 |
| 2.2 内质网应激及其介导细胞凋亡在肝脏疾病中的作用 | 第54-55页 |
| 2.3 钙蛋白酶Calpain与细胞凋亡的研究进展 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-61页 |
| 结论 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 导师简介 | 第63-64页 |
| 作者简介 | 第64-65页 |
| 学位论文数据集 | 第65页 |
