| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略表 | 第10-11页 |
| 引言 | 第11-14页 |
| 第1章 人群研究 | 第14-23页 |
| 1.1 材料与方法 | 第14-16页 |
| 1.1.1 主要材料 | 第14页 |
| 1.1.2 研究对象的选择 | 第14-15页 |
| 1.1.3 人群资料的调查和血标本的收集 | 第15页 |
| 1.1.4 人群血标本中GRP78表达水平的检测 | 第15页 |
| 1.1.5 人群血标本中ALT、AST活性的检测 | 第15-16页 |
| 1.1.6 统计学分析 | 第16页 |
| 1.2 结果 | 第16-17页 |
| 1.2.1 研究对象基本情况分析 | 第16页 |
| 1.2.2 研究对象血清中GRP78含量比较 | 第16-17页 |
| 1.2.3 GRP78含量与ALT、AST相关性分析 | 第17页 |
| 1.3 讨论 | 第17-19页 |
| 1.4 结论 | 第19页 |
| 参考文献 | 第19-23页 |
| 第2章 实验研究 | 第23-48页 |
| 2.1 材料与方法 | 第23-30页 |
| 2.1.1 主要材料 | 第23-24页 |
| 2.1.2 人正常肝细胞HL-7702常规培养 | 第24-25页 |
| 2.1.3 药物、抑制剂处理及细胞培养分组 | 第25-26页 |
| 2.1.4 细胞存活率及毒性检测 | 第26-27页 |
| 2.1.5 细胞分泌的ALT、AST活性的检测 | 第27页 |
| 2.1.6 细胞形态学检测 | 第27页 |
| 2.1.7 细胞内质网状态检测 | 第27页 |
| 2.1.8 细胞内P300、HDAC1、GRP78、CHOP mRNA检测 | 第27-28页 |
| 2.1.9 细胞内P300、HDAC1、GRP78、CHOP蛋白检测 | 第28-29页 |
| 2.1.10 细胞凋亡率检测 | 第29页 |
| 2.1.11 统计学分析 | 第29-30页 |
| 2.2 结果 | 第30-39页 |
| 2.2.1 抗结核药物性肝损伤细胞模型的建立 | 第30-31页 |
| 2.2.2 C646和MS-275浓度的确定 | 第31-32页 |
| 2.2.3 各组细胞中内质网荧光检测 | 第32-34页 |
| 2.2.4 各组P300、HDAC1、GRP78、CHOP mRNA和蛋白检测 | 第34-36页 |
| 2.2.5 各组细胞培养上清液中ALT、AST表达水平检测 | 第36-37页 |
| 2.2.6 各组细胞凋亡率检测 | 第37-39页 |
| 2.3 讨论 | 第39-44页 |
| 2.3.1 ADLI中组蛋白乙酰化水平的变化 | 第40-41页 |
| 2.3.2 ADLI中ERS状态的改变 | 第41-42页 |
| 2.3.3 ADLI中组蛋白乙酰化水平变化对ERS状态的影响 | 第42-44页 |
| 2.4 结论 | 第44页 |
| 参考文献 | 第44-48页 |
| 第3章 综述 内质网应激及组蛋白乙酰化与肝脏疾病的研究进展 | 第48-58页 |
| 3.1 内质网应激与肝脏疾病的关系 | 第48-50页 |
| 3.1.1 内质网应激 | 第48-49页 |
| 3.1.2 内质网应激与肝脏疾病 | 第49-50页 |
| 3.2 组蛋白乙酰化与肝脏疾病的关系 | 第50-52页 |
| 3.2.1 组蛋白乙酰化 | 第50-51页 |
| 3.2.2 组蛋白乙酰化与肝脏疾病 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 导师简介 | 第60-61页 |
| 作者简介 | 第61-62页 |
| 学位论文数据集 | 第62页 |
