| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 缩略词表 | 第8-12页 |
| 第1章 前言 | 第12-25页 |
| 1.1 胰高血糖素样肽- | 第12-17页 |
| 1.1.1 胰高血糖素样肽-1受体 | 第13-14页 |
| 1.1.2 胰高血糖素样肽-1受体信号通路 | 第14-15页 |
| 1.1.3 GLP-1受体激动剂 | 第15-16页 |
| 1.1.4 艾塞那肽 | 第16-17页 |
| 1.2 认知损伤与氧化应激 | 第17-18页 |
| 1.3 认知损伤动物模型 | 第18-21页 |
| 1.3.1 自发认知损伤模型 | 第18页 |
| 1.3.2 化学诱导认知损伤模型 | 第18-19页 |
| 1.3.3 转基因动物模型 | 第19-20页 |
| 1.3.4 高脂饲养认知损伤模型 | 第20页 |
| 1.3.5 缺氧诱导认知损伤模型 | 第20-21页 |
| 1.3.6 脑损伤模型 | 第21页 |
| 1.4 GLP-1R激动剂与认知损伤 | 第21-22页 |
| 1.5 立体依据及实验设计 | 第22-25页 |
| 1.5.1 立题依据 | 第22-23页 |
| 1.5.2 实验设计 | 第23-24页 |
| 1.5.3 实验流程图 | 第24-25页 |
| 第2章 艾塞那肽对认知损伤小鼠的保护作用 | 第25-43页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.2 实验步骤 | 第27-32页 |
| 2.2.1 小鼠的饲养 | 第27-28页 |
| 2.2.2 认知损伤小鼠造模 | 第28页 |
| 2.2.3 艾塞那肽给药及分组 | 第28页 |
| 2.2.4 造模小鼠状态观察 | 第28-29页 |
| 2.2.5 小鼠灌流取脑 | 第29页 |
| 2.2.6 脑组织石蜡包埋切片 | 第29页 |
| 2.2.7 石蜡切片HE染色 | 第29-30页 |
| 2.2.8 石蜡切片免疫组化 | 第30页 |
| 2.2.9 刚果红染色 | 第30-31页 |
| 2.2.10 Y迷宫实验 | 第31页 |
| 2.2.11 水迷宫 | 第31-32页 |
| 2.2.12 统计学分析 | 第32页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第32-43页 |
| 2.3.1 D-半乳糖和氯化铝联合造模对小鼠的影响 | 第32-35页 |
| 2.3.2 EX-4治疗对小鼠体重的影响 | 第35-37页 |
| 2.3.3 EX-4治疗对小鼠行为学的影响 | 第37-42页 |
| 2.3.4 本章小结 | 第42-43页 |
| 第3章 艾塞那肽对神经细胞抗氧化损伤的保护作用 | 第43-55页 |
| 3.1 实验材料 | 第43-46页 |
| 3.2 实验方法 | 第46-48页 |
| 3.2.1 细胞的复苏与传代培养 | 第46页 |
| 3.2.2 SH-SY5Y细胞表面GLP-1R荧光检测 | 第46-47页 |
| 3.2.3 艾塞那肽对SH-SY5Y细胞的促增殖作用 | 第47页 |
| 3.2.4 艾塞那肽对细胞氧化损伤的保护作用 | 第47-48页 |
| 3.2.5 细胞活性氧检测 | 第48页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第48-55页 |
| 3.3.1 SH-SY5Y细胞表面GLP-1R荧光检测 | 第48-50页 |
| 3.3.2 艾塞那肽对细胞的促增殖作用 | 第50-51页 |
| 3.3.3 艾塞那肽在氧化损伤条件下对神经细胞的保护 | 第51-53页 |
| 3.3.4 本章小结 | 第53-55页 |
| 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 作者简介和科研成果 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
