| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 英文缩略词 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 材料 | 第14-18页 |
| 一 实验动物 | 第14页 |
| 二 饲养环境及饲料 | 第14-15页 |
| 三 主要仪器设备及耗材 | 第15-16页 |
| 四 实验用药及主要试剂 | 第16-18页 |
| (一)实验用药 | 第16页 |
| (二)主要试剂 | 第16-17页 |
| (三)主要溶液及试剂配制 | 第17-18页 |
| 实验方法 | 第18-26页 |
| 一 空白血清和通络糖泰含药血清制备 | 第18-19页 |
| 二 新生SD大鼠施万细胞体外原代培养、纯化、传代及鉴定 | 第19-21页 |
| (一)施万细胞原代培养 | 第19页 |
| (二)细胞纯化 | 第19-20页 |
| (三)细胞的传代 | 第20页 |
| (四)细胞计数 | 第20页 |
| (五)细胞冻存及复苏 | 第20-21页 |
| (六)细胞免疫荧光染色 | 第21页 |
| 三 CCK-8法检测通络糖泰对SD大鼠SCs增殖的影响 | 第21-23页 |
| (一)实验分组及条件培养基的配制 | 第21-22页 |
| (二)CCK-8法检测通络糖泰对SD大鼠SCs吸光密度值（Optical density，OD）的影响 | 第22-23页 |
| 四 实时荧光定量PCR法检测通络糖泰对SD大鼠SCsP0、MAG、Krox-20 mRNA表达的影响 | 第23-26页 |
| (一)实验分组及条件培养基的配制 | 第23页 |
| (二)实时荧光定量PCR法检测通络糖泰对SD大鼠SCsP0、MAG、Krox-20 mRNA表达的影响 | 第23-26页 |
| 统计学方法 | 第26页 |
| 结果 | 第26-37页 |
| 一 免疫荧光鉴定结果 | 第26-27页 |
| 二 CCK-8法检测通络糖泰对SD大鼠SCsOD值的影响 | 第27-30页 |
| 三 实时荧光定量PCR法检测通络糖泰对SD大鼠SCs髓鞘调控基因P0、MAG、Krox-20 mRNA表达的影响 | 第30-37页 |
| (一)P0统计结果 | 第32-34页 |
| (二)MAG统计结果 | 第34-35页 |
| (三)Krox-20统计结果 | 第35-37页 |
| 讨论 | 第37-47页 |
| 一 体外原代培养、纯化及鉴定实验方案的选择 | 第37-38页 |
| 二 CCK-8法及PCR法分别检测通络糖泰对SD大鼠SCc增殖及髓鞘调控基因P0、MAG、Krox-20 mRNA表达的实验方案的选择 | 第38-39页 |
| 三 通络糖泰对SD大鼠SCs的增殖及髓鞘调控基因P0、MAG、Krox-20 mRNA表达的影响 | 第39-41页 |
| 四 通络糖泰对SD大鼠SCs增殖及成髓化影响的可能机制探讨 | 第41-47页 |
| (一)胰岛素样生长因子-1（Insulin-like growth factor-1，IGF-1）简介 | 第41页 |
| (二)IGF-1与糖尿病周围神经病变的关系 | 第41-42页 |
| (三)IGF-1与施旺细胞的增殖及髓鞘的形成的关系 | 第42页 |
| (四)糖尿病周围神经病的中医病机探讨 | 第42-44页 |
| (五)通络糖泰组成与药理药效分析 | 第44-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 问题与展望 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-56页 |
| 综述一 施旺细胞与髓鞘的关系 | 第56-61页 |
| 参考文献 | 第59-61页 |
| 综述二 高血糖对DPN发病机制的影响 | 第61-65页 |
| 参考文献 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 附件 1 | 第66-67页 |
