| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略表 | 第10-11页 |
| 引言 | 第11-13页 |
| 第1章 实验研究 | 第13-47页 |
| 1.1 材料与方法 | 第13-27页 |
| 1.1.1 主要试剂 | 第13页 |
| 1.1.2 主要实验仪器 | 第13-14页 |
| 1.1.3 实验动物的选择 | 第14页 |
| 1.1.4 实验大鼠分组 | 第14-15页 |
| 1.1.5 全饥饿大鼠模型的复制 | 第15页 |
| 1.1.6 标本的采集、处理及HE染色 | 第15-17页 |
| 1.1.7 皮质区凋亡神经细胞的检测 | 第17-19页 |
| 1.1.8 RT-PCR法检测皮质区Bcl-2、Bax、Caspase-3 三种因子mRNA的表达情况 | 第19-21页 |
| 1.1.9 Western blot方法检测皮质区Bcl-2、Bax、Caspase-3 三种因子蛋白的表达情况 | 第21-26页 |
| 1.1.10 干湿比重法 | 第26-27页 |
| 1.1.11 统计学分析 | 第27页 |
| 1.2 结果 | 第27-36页 |
| 1.2.1 大鼠一般行为观察及体重变化 | 第27-28页 |
| 1.2.2 皮质区HE染色形态学比较结果 | 第28-30页 |
| 1.2.3 各组大鼠皮质区神经细胞凋亡情况 | 第30-32页 |
| 1.2.4 大脑皮质区在全饥饿状态下Bcl-2、Bax、Caspase-3 mRNA表达结果 | 第32-34页 |
| 1.2.5 大脑皮质区在全饥饿状态下Bcl-2、Bax、Caspase-3 蛋白表达结果 | 第34-36页 |
| 1.2.6 大鼠脑组织含水量的变化 | 第36页 |
| 1.3 讨论 | 第36-42页 |
| 1.3.1 全饥饿大鼠动物模型的制备 | 第37页 |
| 1.3.2 全饥饿状态对大鼠一般状况及体重的影响 | 第37-38页 |
| 1.3.3 全饥饿状态对大鼠皮质区神经细胞凋亡的影响 | 第38-39页 |
| 1.3.4 全饥饿状态下Bcl-2、Bax、Caspase-3 三种因子在皮质凋亡中的调控作用 | 第39-42页 |
| 1.3.5 全饥饿状态对大鼠脑组织重量的影响 | 第42页 |
| 1.4 小结 | 第42页 |
| 参考文献 | 第42-47页 |
| 第2章 综述 | 第47-62页 |
| 2.1 凋亡概述 | 第47-48页 |
| 2.2 细胞凋亡信号传导途径 | 第48-49页 |
| 2.2.1 死亡受体信号通路 | 第48页 |
| 2.2.2 线粒体途径 | 第48-49页 |
| 2.2.3 内质网通路 | 第49页 |
| 2.3 Bcl-2 蛋白家族与细胞凋亡 | 第49-52页 |
| 2.3.1 Bcl-2 蛋白家族的分类、结构与功能 | 第49-51页 |
| 2.3.2 Bcl-2 蛋白家族在细胞凋亡中的调控机制 | 第51-52页 |
| 2.4 Caspase蛋白与细胞凋亡 | 第52-53页 |
| 2.4.1 Caspase蛋白家族的分类、结构与功能 | 第52-53页 |
| 2.4.2 Caspase-3 在细胞凋亡中的作用机制 | 第53页 |
| 2.5 Bcl-2、Bax、Caspase-3 三者在细胞凋亡中的相互作用关系 | 第53-55页 |
| 2.5.1 Bcl-2、Bax蛋白间的相互作用关系 | 第53-54页 |
| 2.5.2 Bcl-2、Bax蛋白表达能够作为Caspase-3 的上游调控因素 | 第54-55页 |
| 2.5.3 Caspase-3 亦能够作为bcl-2 的上游调控因素 | 第55页 |
| 2.6 小结 | 第55页 |
| 参考文献 | 第55-62页 |
| 结论 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 导师简介 | 第64-65页 |
| 作者简介 | 第65-66页 |
| 学位论文数据集 | 第66页 |
