| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第12-22页 |
| 第1节 金葡菌研究概述 | 第12-15页 |
| 1.1 金葡菌的危害 | 第12-13页 |
| 1.2 金葡菌的毒力因子 | 第13-15页 |
| 1.2.1 溶血素 | 第13-14页 |
| 1.2.2 肠毒素 | 第14-15页 |
| 第2节 盐酸小檗碱研究概述 | 第15-17页 |
| 2.1 盐酸小檗碱研究进展 | 第15页 |
| 2.2 抑菌作用 | 第15页 |
| 2.3 抗肿瘤 | 第15-16页 |
| 2.4 降血糖 | 第16页 |
| 2.5 抗炎作用 | 第16页 |
| 2.6 抗心律失常 | 第16-17页 |
| 2.7 降血压 | 第17页 |
| 第3节 细胞促炎因子 | 第17-19页 |
| 3.1 肿瘤坏死因子TNF-α | 第17页 |
| 3.2 白介素IL-1 | 第17-18页 |
| 3.3 白介素IL-6 | 第18-19页 |
| 第4节 氧化损伤的概述 | 第19页 |
| 第5节 研究目的及内容 | 第19-22页 |
| 5.1 研究目的 | 第19-20页 |
| 5.2 研究内容 | 第20-22页 |
| 第2章 盐酸小檗碱对金葡菌的抑制作用 | 第22-36页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-24页 |
| 2.1.1 菌种及药品来源 | 第22页 |
| 2.1.2 实验试剂及耗材 | 第22-23页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第23页 |
| 2.1.4 制备试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.5 金葡菌活化 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-28页 |
| 2.2.1 盐酸小檗碱对金葡菌MIC测定 | 第24-25页 |
| 2.2.2 盐酸小檗碱对金葡菌生长曲线测定 | 第25页 |
| 2.2.3 盐酸小檗碱对金葡菌纸片法琼脂扩散实验 | 第25-26页 |
| 2.2.4 金葡菌菌悬液紫外吸收测定 | 第26页 |
| 2.2.5 金葡菌菌悬液内膜通透性实验 | 第26-27页 |
| 2.2.6 扫描电镜试验 | 第27页 |
| 2.2.7 统计学分析 | 第27-28页 |
| 2.3 实验结果及讨论 | 第28-33页 |
| 2.3.1 盐酸小檗碱对金葡菌MIC测定结果 | 第28-29页 |
| 2.3.2 盐酸小檗碱作用下金葡菌生长曲线 | 第29页 |
| 2.3.3 琼脂扩散法检测盐酸小檗碱的抑制效果 | 第29-30页 |
| 2.3.4 金葡菌菌悬液紫外吸收测定结果 | 第30-31页 |
| 2.3.5 金葡菌悬液中β-半乳糖苷酶活力变化 | 第31-33页 |
| 2.3.6 扫描电镜下细菌的形态分析 | 第33页 |
| 2.4 小结 | 第33-36页 |
| 第3章 盐酸小檗碱抗金葡菌分泌外毒素机制研究 | 第36-48页 |
| 3.1 实验材料 | 第36-38页 |
| 3.1.1 菌种、细胞及药品来源 | 第36页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第36页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第36-37页 |
| 3.1.4 制备试剂 | 第37-38页 |
| 3.1.5 金葡菌的活化 | 第38页 |
| 3.2 实验方法 | 第38-42页 |
| 3.2.1 盐酸小檗碱作用下金葡菌的溶血能力 | 第38-39页 |
| 3.2.2 WesternBlot法测定盐酸小檗碱作用金葡菌外毒素的表达 | 第39-40页 |
| 3.2.3 ELISA检测细胞因子 | 第40-42页 |
| 3.2.4 统计学分析 | 第42页 |
| 3.3 实验结果及讨论 | 第42-47页 |
| 3.3.1 盐酸小檗碱对金葡菌溶血活力的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.2 WesternBlot检测盐酸小檗碱对毒力蛋白的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.3 ELISA测定盐酸小檗碱对诱导肝细胞L02释放TNF-α的影响.. | 第44-45页 |
| 3.3.4 ELISA测定盐酸小檗碱对诱导肝细胞L02分泌IL-6的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.5 ELISA测定盐酸小檗碱对诱导肝细胞L02分泌IL-1β的影响 | 第46-47页 |
| 3.4 小结 | 第47-48页 |
| 第4章 盐酸小檗碱对α-溶血素诱导氧化损伤的抑制作用 | 第48-58页 |
| 4.1 实验材料 | 第48-49页 |
| 4.1.1 细胞及药品来源 | 第48页 |
| 4.1.2 主要试剂及耗材 | 第48-49页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第49页 |
| 4.1.4 主要溶液的配制 | 第49页 |
| 4.2 实验方法 | 第49-52页 |
| 4.2.1 细胞培养 | 第49页 |
| 4.2.2 实验分组 | 第49-50页 |
| 4.2.3 实验分组的细胞抑制率检测 | 第50页 |
| 4.2.4 细胞丙二醛(MDA)含量测定 | 第50页 |
| 4.2.5 细胞超氧化物歧化酶(SOD)活性测定 | 第50-51页 |
| 4.2.6 细胞谷胱甘肽酶(GSH-Px)活性测定 | 第51页 |
| 4.2.7 流氏细胞术对活性氧(ROS)检测 | 第51页 |
| 4.2.8 流氏细胞术对线粒体膜电位检测 | 第51-52页 |
| 4.2.9 统计学分析 | 第52页 |
| 4.3 实验结果及讨论 | 第52-56页 |
| 4.3.1 实验分组对细胞增殖的影响 | 第52-53页 |
| 4.3.2 肝细胞L02内MDA水平的影响 | 第53页 |
| 4.3.3 肝细胞L02内SOD活性的影响 | 第53-54页 |
| 4.3.4 肝细胞L02内GSH-Px活性的影响 | 第54-55页 |
| 4.3.5 流氏细胞术对ROS检测 | 第55页 |
| 4.3.6 流氏细胞术对线粒体膜电位检测 | 第55-56页 |
| 4.4 小结 | 第56-58页 |
| 第5章 结论 | 第58-60页 |
| 5.1 全文结论 | 第58页 |
| 5.2 创新点 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-68页 |
| 导师简介 | 第68-70页 |
| 作者介绍及攻读硕士期间的科研成果 | 第70-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
