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肾综合征出血热患者CD100表达的变化规律及其与疾病的关系

缩略语表第6-9页
中文摘要第9-12页
ABSTRACT第12-16页
前言第17-19页
文献回顾第19-40页
    第一部分 汉滩病毒及其感染后的免疫应答第19-28页
        1 汉滩病毒及其致病机制第19-20页
            1.1 汉坦病毒的分型和结构第19页
            1.2 汉滩病毒的致病机制第19-20页
        2 汉坦病毒感染引起的免疫应答第20-22页
            2.1 固有免疫第20-21页
            2.2 适应性免疫第21-22页
        3 抗病毒免疫应答中 CD8~+T 细胞的分化第22-28页
            3.1 病毒感染诱导 CD8~+T 细胞的免疫应答第22-23页
            3.2 初始细胞、效应细胞和记忆细胞第23-28页
    第二部分 SEMA4D/CD100 的基础和临床研究进展第28-40页
        1 Sema4D/CD100 及其受体第28-31页
            1.1 Sema4D/CD100 的发现第28页
            1.2 免疫信号素第28页
            1.3 Sema4D/CD100 的结构第28-29页
            1.4 CD100 的组织分布和表达第29页
            1.5 CD100 的受体第29-31页
        2 CD100 的生物学功能第31-34页
            2.1 CD100 调节免疫功能第31-32页
            2.2 CD100 调节其他功能第32-34页
            2.3 可溶型 CD100 及其生物学功能第34页
        3 CD100 与疾病第34-39页
            3.1 CD100 与自身免疫性疾病第34-35页
            3.2 CD100 与肿瘤第35-36页
            3.3 CD100 与肾脏疾病第36-37页
            3.4 CD100 与过敏性疾病第37页
            3.5 CD100 与 GVHD第37页
            3.6 CD100 与动脉粥样硬化第37-38页
            3.7 CD100 与骨质代谢第38页
            3.8 CD100 与皮肤创伤愈合第38页
            3.9 CD100 与感染性疾病第38-39页
        4 结语第39-40页
实验一 定量检测人可溶型 CD100 分子双抗体夹心 ELISA 试剂盒的建立及应用第40-55页
    1 材料第40-42页
        1.1 动物和细胞第40页
        1.2 试剂、耗材第40-41页
        1.3 仪器第41-42页
    2 方法第42-48页
        2.1 CD100 单克隆抗体的制备、纯化和鉴定第42-46页
        2.2 定量检测可溶型 CD100 分子的夹心 ELISA 方法建立第46-48页
        2.3 CD100 双抗体夹心 ELISA 试剂盒的主要参数第48页
    3 结果第48-53页
        3.1 CD100 单克隆抗体的鉴定第48-49页
        3.2 定量检测可溶型 CD100 分子的夹心 ELISA 方法建立第49-51页
        3.3 CD100 双抗体夹心 ELISA 方法的主要参数第51-53页
    4 讨论第53-55页
实验二 HFRS 患者血浆可溶型 CD100 水平与病情的关系第55-72页
    1 材料第55-56页
        1.1 试剂第55-56页
        1.2 仪器第56页
    2 方法第56-60页
        2.1 HFRS 患者血浆标本采集及临床资料的收集第56页
        2.2 HFRS 患者血浆 sCD100 水平的检测第56页
        2.3 HFRS 患者血浆 sCD100 分子量的鉴定第56-58页
        2.4 免疫荧光染色流式细胞术检测 HFRS 患者 PBMC mCD100 的表达第58-59页
        2.5 sCD100 产生的机制第59-60页
        2.6 统计学分析第60页
    3 结果第60-69页
        3.1 HFRS 患者临床资料第60-62页
        3.2 HFRS 患者血浆 sCD100 水平的变化第62-65页
        3.3 HFRS 患者血浆 sCD100 分子量第65-66页
        3.4 HFRS 患者 PBMC 表面 mCD100 表达的变化第66-68页
        3.5 sCD100 产生的机制第68-69页
    4 讨论第69-72页
实验三 HFRS 患者急性期外周血新的 CD8LOWCD100 T 细胞亚群的鉴定及其与疾病的关系第72-91页
    1 材料第72-73页
        1.1 试剂第72-73页
        1.2 仪器第73页
    2 方法第73-77页
        2.1 HFRS 患者血液标本及临床资料的收集第73页
        2.2 HFRS 患者 CD8~+T 细胞表面 mCD100 的动态变化规律及其与病情的关系第73-74页
        2.3 HFRS 患者外周血 CD8~+T 细胞不同亚群表面标志的比较第74-75页
        2.4 HFRS 患者 CD8~+T 细胞不同亚群表达杀伤介质的检测第75-76页
        2.5 HFRS 患者 CD8~+T 细胞不同亚群在病毒特异性抗原肽刺激下表达细胞因子的检测第76-77页
        2.6 统计学分析第77页
    3 结果第77-87页
        3.1 HFRS 患者 PBMC 标本数及临床资料第77页
        3.2 HFRS 患者急性期外周血 CD8~+T 三个亚群的鉴定及其与病情的关系第77-81页
        3.3 HFRS 患者 CD8~+T 细胞不同亚群表面标志的比较第81-85页
        3.4 HFRS 患者外周血 CD8~+T 细胞三个亚群杀伤介质的表达的比较第85-86页
        3.5 HFRS 患者急性期外周血 CD8~+T 细胞三个亚群在病毒特异性抗原刺激下分泌细胞因子的比较第86-87页
    4 讨论第87-91页
小结第91-92页
参考文献第92-99页
个人简历和研究成果第99-101页
致谢第101页

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