缩略词 | 第8-10页 |
摘要 | 第10-12页 |
Abstract | 第12-13页 |
前言 | 第14-35页 |
第一章 PGG对狂犬病病毒复制的抑制作用 | 第35-73页 |
1.1 实验材料 | 第35-39页 |
1.1.1 细胞、病毒 | 第35页 |
1.1.2 实验动物 | 第35页 |
1.1.3 菌株、质粒载体 | 第35页 |
1.1.4 主要试剂 | 第35-38页 |
1.1.5 主要仪器 | 第38-39页 |
1.2 实验方法 | 第39-51页 |
1.2.1 细胞的培养 | 第39页 |
1.2.2 病毒的培养 | 第39页 |
1.2.3 病毒滴度的测定 | 第39-40页 |
1.2.4 SRB法测定PGG的细胞毒性 | 第40页 |
1.2.5 PGG灭活狂犬病病毒的检测 | 第40-41页 |
1.2.6 PGG抑制狂犬病病毒的检测 | 第41页 |
1.2.7 PGG不同作用形式抑制狂犬病病毒的检测 | 第41-42页 |
1.2.8 直接免疫荧光实验 | 第42页 |
1.2.9 实时荧光定量PCR | 第42-43页 |
1.2.10 免疫印迹实验 | 第43-44页 |
1.2.11 细胞内的免疫印迹实验 | 第44-45页 |
1.2.12 狂犬病病毒N、M、G和L蛋白的蛋白及多克隆抗体的制备 | 第45-49页 |
1.2.13 PGG对感染狂犬病病毒小鼠的治疗 | 第49-50页 |
1.2.14 荧光抗体实验 | 第50页 |
1.2.15 病毒抗体中和实验 | 第50-51页 |
1.3 实验结果 | 第51-69页 |
1.3.1 PGG的细胞毒性 | 第51-52页 |
1.3.2 PGG抑制狂犬病病毒的增殖和病毒滴度 | 第52-53页 |
1.3.3 PGG直接灭活狂犬病病毒 | 第53-54页 |
1.3.4 N、M、G和L蛋白多克隆抗体的制备与鉴定 | 第54-62页 |
1.3.5 PGG抑制狂犬病病毒基因和蛋白的表达 | 第62-63页 |
1.3.6 PGG处理不同时间对狂犬病病毒的作用 | 第63-65页 |
1.3.7 PGG对狂犬病病毒不同毒株的抑制作用 | 第65-66页 |
1.3.8 PGG在小鼠体内抑制狂犬病病毒的效果 | 第66-69页 |
1.4 讨论 | 第69-71页 |
1.5 小结 | 第71-73页 |
第二章 PGG抑制狂犬病病毒复制的作用机制 | 第73-107页 |
2.1 实验材料 | 第73-76页 |
2.1.1 质粒载体 | 第73页 |
2.1.2 菌株 | 第73页 |
2.1.3 细胞、病毒 | 第73页 |
2.1.4 主要试剂 | 第73-75页 |
2.1.5 主要仪器 | 第75-76页 |
2.2 实验方法 | 第76-80页 |
2.2.1 PGG与狂犬病病毒吸附 | 第76页 |
2.2.2 PGG与狂犬病病毒侵入 | 第76页 |
2.2.3 直接免疫荧光实验 | 第76页 |
2.2.4 实时荧光定量PCR | 第76页 |
2.2.5 免疫印迹实验 | 第76-77页 |
2.2.6 狂犬病病毒感染宿主细胞的microRNA芯片分析 | 第77页 |
2.2.7 荧光素酶报告基因实验 | 第77-78页 |
2.2.8 PGG处理宿主细胞的蛋白质学分析 | 第78-79页 |
2.2.9 构建稳定上调表达SOCS3/STAT3蛋白的细胞系 | 第79页 |
2.2.10 SOCS3/STAT3蛋白与狂犬病病毒复制的检测 | 第79-80页 |
2.2.11 ELISA检测PGG处理宿主的细胞因子 | 第80页 |
2.3 实验结果 | 第80-102页 |
2.3.1 PGG抑制狂犬病病毒的吸附和侵入 | 第80-81页 |
2.3.2 PGG抑制mTOR依赖的细胞自噬来抑制狂犬病病毒的复制 | 第81-84页 |
2.3.3 狂犬病病毒感染与SOCS3/STAT3信号通路 | 第84-90页 |
2.3.4 PGG通过SOCS3/STAT3信号通路调控狂犬病病毒的复制 | 第90-98页 |
2.3.5 PGG处理对宿主细胞蛋白的影响 | 第98-101页 |
2.3.6 PGG逆转RABV引起的SOCS3/STAT3信号通路抑制的IL-10和IFN-α的表达 | 第101-102页 |
2.4 讨论 | 第102-104页 |
2.5 小结 | 第104-107页 |
第三章 结论与展望 | 第107-109页 |
参考文献 | 第109-125页 |
附录 | 第125-129页 |
作者在学期间取得的学术成果 | 第129-131页 |
主要简历 | 第131-133页 |
致谢 | 第133-134页 |