| 致谢 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-11页 |
| Abstract | 第11-15页 |
| 附表清单 | 第20-25页 |
| 缩写表 | 第25-31页 |
| 第一章 文献综述 | 第31-57页 |
| 1 紫锥菊研究进展 | 第31-36页 |
| 1.1 简介 | 第31页 |
| 1.2 生物活性 | 第31-35页 |
| 1.3 主要活性成分 | 第35页 |
| 1.4 安全性 | 第35-36页 |
| 2 巨噬细胞研究进展 | 第36-42页 |
| 2.1 简介 | 第36页 |
| 2.2 表面标志物 | 第36页 |
| 2.3 来源 | 第36-37页 |
| 2.4 激活方式 | 第37-40页 |
| 2.5 受体 | 第40-41页 |
| 2.6 功能 | 第41-42页 |
| 3 树突状细胞研究进展 | 第42-49页 |
| 3.1 简介 | 第43页 |
| 3.2 分类 | 第43-44页 |
| 3.3 表型 | 第44-45页 |
| 3.4 来源与发育 | 第45-46页 |
| 3.5 成熟与功能 | 第46-49页 |
| 3.6 DC与获得性免疫耐受 | 第49页 |
| 4 TLR研究进展 | 第49-56页 |
| 4.1 简介 | 第49页 |
| 4.2 种类及配体 | 第49-53页 |
| 4.3 表达与分布 | 第53页 |
| 4.4 结构 | 第53-54页 |
| 4.5 信号通路 | 第54-56页 |
| 5 本研究的目的和意义 | 第56-57页 |
| 第二章 紫锥菊提取对小鼠机体免疫功能和抗鼠伤寒沙门氏菌感染能力的影响 | 第57-84页 |
| 1 试验材料 | 第57-60页 |
| 1.1 试验药物 | 第57页 |
| 1.2 试验动物 | 第57-58页 |
| 1.3 试验菌株 | 第58页 |
| 1.4 试剂 | 第58-59页 |
| 1.5 主要仪器与设备 | 第59-60页 |
| 2 试验方法 | 第60-64页 |
| 2.1 ST的培养及准备 | 第60页 |
| 2.2 小鼠分组及给药方式 | 第60-61页 |
| 2.3 样品的采集和预处理 | 第61-62页 |
| 2.4 指标测定 | 第62-64页 |
| 2.5 数据处理 | 第64页 |
| 3 结果与分析 | 第64-80页 |
| 3.1 EE对正常小鼠和ST感染小鼠体重与存活率的影响 | 第64-65页 |
| 3.2 EE对正常小鼠和ST感染小鼠肠粘膜结构的影响 | 第65-68页 |
| 3.3 EE对正常小鼠和ST感染小鼠肠粘膜中性粒细胞浸润的影响 | 第68-69页 |
| 3.4 EE对ST在小鼠体内定植和移位的影响 | 第69-70页 |
| 3.5 EE对正常小鼠和ST感染小鼠免疫器官的影响 | 第70页 |
| 3.6 EE对正常小鼠和ST感染小鼠脾脏T细胞亚群、B细胞和巨噬细胞的影响 | 第70-72页 |
| 3.7 EE对正常小鼠和ST感染小鼠IgG和sIgA分泌的影响 | 第72-73页 |
| 3.8 EE对正常小鼠和ST感染小鼠炎症细胞因子分泌的影响 | 第73-77页 |
| 3.9 EE对正常小鼠和ST感染小鼠炎症细胞因子基因表达的影响 | 第77-80页 |
| 3.10 EE对正常小鼠和ST感染小鼠肠粘膜NO产生的影响 | 第80页 |
| 4 讨论 | 第80-83页 |
| 4.1 EE对正常小鼠机体免疫功能的影响 | 第80-81页 |
| 4.2 EE对小鼠抗ST感染能力的影响 | 第81-83页 |
| 5 小结 | 第83-84页 |
| 第三章 紫锥菊提取物对小鼠巨噬细胞免疫功能的影响 | 第84-135页 |
| 1 试验材料 | 第84-88页 |
| 1.1 试验药物 | 第84页 |
| 1.2 试验细胞 | 第84页 |
| 1.3 试验动物 | 第84页 |
| 1.4 试剂 | 第84-87页 |
| 1.5 主要仪器与设备 | 第87-88页 |
| 2 试验方法 | 第88-97页 |
| 2.1 EE对RAW264.7小鼠巨噬细胞系免疫功能的影响 | 第88-91页 |
| 2.1.1 细胞培养及准备 | 第88页 |
| 2.1.2 EE安全性的评估 | 第88-89页 |
| 2.1.3 RAW264.7细胞活化的检测 | 第89页 |
| 2.1.4 RAW264.7细胞吞噬功能的检测 | 第89-90页 |
| 2.1.5 RAW264.7细胞细胞因子和iNOS基因表达的检测 | 第90-91页 |
| 2.1.6 RAW264.7细胞细胞因子分泌的检测 | 第91页 |
| 2.1.7 RAW264.7细胞NO合成能力的检测 | 第91页 |
| 2.2 EE对小鼠BMDM免疫功能的影响 | 第91-97页 |
| 2.2.1 细胞分离及培养 | 第91-92页 |
| 2.2.2 小鼠BMDM的鉴定 | 第92页 |
| 2.2.3 EE细胞毒性的检测 | 第92页 |
| 2.2.4 小鼠BMDM极化的鉴定 | 第92-94页 |
| 2.2.5 小鼠BMDM活化的检测 | 第94页 |
| 2.2.6 小鼠BMDM吞噬功能的检测 | 第94-95页 |
| 2.2.7 小鼠BMDM其他细胞因子基因表达的检测 | 第95页 |
| 2.2.8 小鼠BMDM细胞因子分泌的检测 | 第95页 |
| 2.2.9 小鼠BMDM NO合成能力的检测 | 第95页 |
| 2.2.10 小鼠BMDM TLR信号通路的研究 | 第95-97页 |
| 2.3 数据处理 | 第97页 |
| 3 结果与分析 | 第97-131页 |
| 3.1 EE对RAW264.7小鼠巨噬细胞系免疫功能的影响 | 第97-105页 |
| 3.1.1 EE对RAW264.7细胞的安全性 | 第97-98页 |
| 3.1.2 EE对RAW264.7细胞活化和吞噬功能的影响 | 第98-99页 |
| 3.1.3 EE对RAW264.7细胞细胞因子和iNOS基因表达的影响 | 第99-103页 |
| 3.1.4 EE对RAW264.7细胞因子分泌的影响 | 第103-105页 |
| 3.1.6 EE对RAW264.7细胞NO合成功能的影响 | 第105页 |
| 3.2 EE对小鼠BMDM免疫功能的影响 | 第105-131页 |
| 3.2.1 小鼠BMDM的鉴定 | 第105-106页 |
| 3.2.2 EE对小鼠BMDM的安全性 | 第106-107页 |
| 3.2.3 EE对小鼠BMDM极化的影响 | 第107-112页 |
| 3.2.4 EE对小鼠BMDM活化的影响 | 第112-114页 |
| 3.2.5 EE对小鼠BMDM吞噬功能的影响 | 第114页 |
| 3.2.6 EE对小鼠BMDM其他细胞因子基因表达的影响 | 第114-117页 |
| 3.2.7 EE对小鼠BMDM炎症因子和IFN-β分泌的影响 | 第117-118页 |
| 3.2.8 EE对小鼠BMDM NO合成功能的影响 | 第118页 |
| 3.2.9 EE对小鼠BMDM TLR信号通路的影响 | 第118-131页 |
| 4 讨论 | 第131-134页 |
| 5 小结 | 第134-135页 |
| 第四章 紫锥菊提取物对小鼠树突状细胞免疫功能的影响 | 第135-167页 |
| 1 试验材料 | 第135-136页 |
| 1.1 试验药物 | 第135页 |
| 1.2 试验动物 | 第135页 |
| 1.3 试剂 | 第135-136页 |
| 1.4 主要仪器与设备 | 第136页 |
| 2 试验方法 | 第136-141页 |
| 2.1 细胞分离及培养 | 第137页 |
| 2.2 小鼠BMDC的鉴定 | 第137页 |
| 2.3 EE细胞毒性的检测 | 第137-138页 |
| 2.4 BMDC成熟的检测 | 第138-139页 |
| 2.5 BMDC抗原摄取能力的检测 | 第139-140页 |
| 2.6 BMDC细胞因子基因表达的检测 | 第140页 |
| 2.7 BMDC细胞因子分泌的检测 | 第140页 |
| 2.8 BMDC TLR信号通路的研究 | 第140-141页 |
| 2.9 数据处理 | 第141页 |
| 3 结果与分析 | 第141-163页 |
| 3.1 小鼠BMDC的鉴定 | 第141-142页 |
| 3.2 EE对小鼠BMDC的安全性 | 第142-143页 |
| 3.3 EE对小鼠BMDC成熟的影响 | 第143-147页 |
| 3.4 EE对小鼠BMDC抗原摄取能力的影响 | 第147-148页 |
| 3.5 EE对小鼠BMDC细胞因子基因表达的影响 | 第148-152页 |
| 3.6 EE对小鼠BMDC细胞因子分泌的影响 | 第152-153页 |
| 3.7 EE对小鼠BMDC TLR信号通路的影响 | 第153-163页 |
| 4 讨论 | 第163-166页 |
| 5 小结 | 第166-167页 |
| 第五章 结论、创新点和研究展望 | 第167-168页 |
| 参考文献 | 第168-197页 |
| 附录：毕业论文相关实验操作 | 第197-208页 |
| 作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第208-210页 |
