| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 第一章 前言 | 第14-25页 |
| 1.1 昆虫迁飞行为调控的研究进展 | 第14-16页 |
| 1.1.1 昆虫迁飞行为的环境调控 | 第14-15页 |
| 1.1.2 昆虫迁飞行为的激素调控 | 第15页 |
| 1.1.3 昆虫迁飞行为的遗传调控 | 第15页 |
| 1.1.4 昆虫迁飞行为的分子调控 | 第15-16页 |
| 1.2 昆虫迁飞的定向机制 | 第16-18页 |
| 1.2.1 太阳罗盘定向 | 第16-17页 |
| 1.2.2 偏振光定向 | 第17页 |
| 1.2.3 地面标志物和侧风漂移补偿 | 第17页 |
| 1.2.4 地磁定向 | 第17-18页 |
| 1.3 地磁定向的研究进展 | 第18-21页 |
| 1.3.1 磁感应假说 | 第18-19页 |
| 1.3.2 磁感应分子的研究进展 | 第19-21页 |
| 1.4 孢粉学在昆虫迁飞研究中的应用 | 第21-22页 |
| 1.4.1 孢粉学研究昆虫迁飞的基本原理 | 第21页 |
| 1.4.2 花粉的形态学鉴定 | 第21-22页 |
| 1.4.3 DNA条形码技术在花粉鉴定中的应用 | 第22页 |
| 1.4.4 孢粉学在昆虫虫源地分析中的应用 | 第22页 |
| 1.5 地老虎类害虫的研究进展 | 第22-23页 |
| 1.6 本研究的目的与意义 | 第23-25页 |
| 第二章 小地老虎定向行为的测定 | 第25-32页 |
| 2.1 材料与方法 | 第25-27页 |
| 2.1.1 试虫来源 | 第25-26页 |
| 2.1.2 试验装置 | 第26页 |
| 2.1.3 定向行为测定 | 第26页 |
| 2.1.4 数据分析 | 第26-27页 |
| 2.2 结果与分析 | 第27-30页 |
| 2.2.1 第一迁飞期的定向行为 | 第27-28页 |
| 2.2.2 第二迁飞期的定向行为 | 第28-29页 |
| 2.2.3 第三迁飞期的定向行为 | 第29-30页 |
| 2.3 讨论 | 第30-32页 |
| 第三章 黄地老虎远距离迁飞携带花粉的研究 | 第32-67页 |
| 3.1 材料与方法 | 第32-37页 |
| 3.1.1 昆虫来源 | 第32-33页 |
| 3.1.2 试验设备 | 第33页 |
| 3.1.3 花粉初步检测 | 第33页 |
| 3.1.4 扫描电镜观测 | 第33页 |
| 3.1.5 单粒花粉DNA的提取 | 第33-34页 |
| 3.1.6 扩增引物 | 第34页 |
| 3.1.7 PCR扩增体系和程序 | 第34-35页 |
| 3.1.8 PCR产物胶回收 | 第35页 |
| 3.1.9 连接与转化 | 第35-36页 |
| 3.1.10 阳性克隆的检测 | 第36页 |
| 3.1.11 序列处理及分析 | 第36页 |
| 3.1.12 花粉形态鉴定 | 第36页 |
| 3.1.13 花粉携带率数据分析 | 第36-37页 |
| 3.2 结果与分析 | 第37-64页 |
| 3.2.1 迁飞黄地老虎携带花粉的物种鉴定 | 第37页 |
| 3.2.2 迁飞黄地老虎年际间花粉携带率差异 | 第37-38页 |
| 3.2.3 迁飞黄地老虎不同月份花粉携带率 | 第38-40页 |
| 3.2.4 迁飞黄地老虎不同迁飞期花粉携带率 | 第40页 |
| 3.2.5 迁飞黄地老虎雌雄成虫花粉携带率差异 | 第40-41页 |
| 3.2.6 黄地老虎不同迁飞期携带花粉分析 | 第41-42页 |
| 3.2.7 迁飞黄地老虎携带花粉特征分析 | 第42-43页 |
| 3.2.8 2014-2017年花粉对黄地老虎虫源地的指示 | 第43-64页 |
| 3.3 讨论 | 第64-67页 |
| 第四章 小地老虎隐花色素和磁感应基因克隆及表达 | 第67-89页 |
| 4.1 材料与方法 | 第68-75页 |
| 4.1.1 昆虫饲养 | 第68页 |
| 4.1.2 小地老虎总RNA的提取 | 第68-69页 |
| 4.1.3 反转录PCR | 第69页 |
| 4.1.4 cDNA第一链合成 | 第69-70页 |
| 4.1.5 Ai-MagR基因保守序列的克隆 | 第70-71页 |
| 4.1.6 PCR产物胶回收 | 第71页 |
| 4.1.7 连接与转化 | 第71页 |
| 4.1.8 阳性克隆的检测 | 第71页 |
| 4.1.9 Ai-MagR基因全序列的克隆 | 第71-72页 |
| 4.1.10 PCR产物胶回收 | 第72页 |
| 4.1.11 连接与转化 | 第72页 |
| 4.1.12 阳性克隆的检测 | 第72页 |
| 4.1.13 序列分析 | 第72-73页 |
| 4.1.14 组织表达谱分析 | 第73-74页 |
| 4.1.15 不同发育阶段表达谱 | 第74页 |
| 4.1.16 光周期对基因表达的影响 | 第74-75页 |
| 4.1.17 Ai-Crys和Ai-MagR基因在室内种群和迁飞种群间的表达差异 | 第75页 |
| 4.2 结果与分析 | 第75-85页 |
| 4.2.1 Ai-MagR基因全长cDNA的克隆及序列分析 | 第75-76页 |
| 4.2.2 Ai-MagR蛋白序列比对及系统进化分析 | 第76-79页 |
| 4.2.3 组织表达谱分析 | 第79-80页 |
| 4.2.4 不同发育阶段表达谱分析 | 第80-81页 |
| 4.2.5 不同光周期对Ai-Crys和Ai-MagR基因表达量的影响 | 第81-83页 |
| 4.2.6 Ai-Crys和Ai-MagR基因在室内种群和迁飞种群间的表达差异 | 第83-85页 |
| 4.3 讨论 | 第85-89页 |
| 第五章 黄地老虎隐花色素和磁感应基因克隆及表达 | 第89-112页 |
| 5.1 材料与方法 | 第89-93页 |
| 5.1.1 昆虫饲养 | 第89页 |
| 5.1.2 黄地老虎总RNA的提取 | 第89-90页 |
| 5.1.3 反转录PCR | 第90页 |
| 5.1.4 cDNA第一链合成 | 第90页 |
| 5.1.5 As-Crys和As-MagR基因保守序列的克隆 | 第90-91页 |
| 5.1.6 PCR产物胶回收 | 第91页 |
| 5.1.7 连接与转化 | 第91页 |
| 5.1.8 阳性克隆的检测 | 第91页 |
| 5.1.9 As-Crys和As-MagR基因全序列的克隆 | 第91页 |
| 5.1.10 PCR产物胶回收 | 第91页 |
| 5.1.11 连接与转化 | 第91-92页 |
| 5.1.12 阳性克隆的检测 | 第92页 |
| 5.1.13 序列分析 | 第92页 |
| 5.1.14 组织表达谱分析 | 第92页 |
| 5.1.15 不同发育阶段表达谱 | 第92页 |
| 5.1.16 光周期对基因表达的影响 | 第92-93页 |
| 5.1.17 As-Crys和As-MagR基因在室内种群和迁飞种群间的表达差异 | 第93页 |
| 5.2 结果与分析 | 第93-108页 |
| 5.2.1 As-Crys和As-MagR基因全长cDNA的克隆及序列分析 | 第93-96页 |
| 5.2.2 黄地老虎As-Crys蛋白序列比对及系统进化分析 | 第96-100页 |
| 5.2.3 组织表达谱分析 | 第100-101页 |
| 5.2.4 不同发育阶段表达谱分析 | 第101-102页 |
| 5.2.5 不同光周期对As-Crys和As-MagR基因表达量的影响 | 第102-106页 |
| 5.2.6 As-Crys和As-MagR基因在室内种群和迁飞种群间的表达差异 | 第106-108页 |
| 5.3 讨论 | 第108-112页 |
| 第六章 总结与展望 | 第112-116页 |
| 6.1 总结 | 第112-113页 |
| 6.1.1 小地老虎定向行为的测定 | 第112页 |
| 6.1.2 黄地老虎携带的花粉对其寄主植物、虫源地和迁飞方向的指示作用 | 第112-113页 |
| 6.1.3 小地老虎隐花色素和磁感应基因的克隆及表达 | 第113页 |
| 6.1.4 黄地老虎隐花色素和磁感应基因的克隆及表达 | 第113页 |
| 6.2 本研究的创新之处 | 第113-114页 |
| 6.3 展望 | 第114-116页 |
| 参考文献 | 第116-129页 |
| 附录 | 第129-144页 |
| 攻读博士期间的主要学术成果 | 第144-145页 |
| 致谢 | 第145页 |
