符号说明 | 第4-7页 |
摘要 | 第7-8页 |
Abstract | 第8-9页 |
1 前言 | 第10-20页 |
1.1 山银花概况 | 第10-13页 |
1.1.1 化学成分研究 | 第10-11页 |
1.1.2 药理研究 | 第11-13页 |
1.2 酶促褐变的研究 | 第13-17页 |
1.2.1 褐变相关酶的简介 | 第13-14页 |
1.2.2 酶促褐变的机理 | 第14-15页 |
1.2.3 控制酶促褐变的常用方法 | 第15-17页 |
1.3 酶蛋白的分离纯化 | 第17-19页 |
1.4 本课题研究目的及研究意义 | 第19页 |
1.5 本课题研究内容和目标 | 第19-20页 |
2 材料与方法 | 第20-28页 |
2.1 试验材料、试剂、仪器 | 第20页 |
2.2 多酚氧化酶的提取纯化与特性研究 | 第20-24页 |
2.2.1 多酚氧化酶活力测定、蛋白质含量的测定 | 第20-21页 |
2.2.2 多酚氧化酶提取纯化 | 第21-22页 |
2.2.3 电泳与MALLS测定蛋白分了量 | 第22-23页 |
2.2.4 多酚氧化酶部分酶学性质 | 第23-24页 |
2.3 过氧化物酶特性研究 | 第24-26页 |
2.3.1 过氧化物酶提取 | 第24页 |
2.3.2 过氧化物酶活力测定方法 | 第24页 |
2.3.3 过氧化物酶部分酶学性质 | 第24-26页 |
2.4 山银花不同干燥方法酶活性与活性成分 | 第26-28页 |
2.4.1 山银花不同干燥方法 | 第26页 |
2.4.2 活性成分的测定 | 第26-27页 |
2.4.3 褐变酶活性与活性成分相关性分析 | 第27-28页 |
3 结果与讨论 | 第28-46页 |
3.1 多酚氧化酶分离纯化 | 第28-30页 |
3.1.1 多酚氧化酶的纯化 | 第28-29页 |
3.1.2 多酚氧化酶分子量的确定 | 第29-30页 |
3.2 多酚氧化酶学性质 | 第30-36页 |
3.3 过氧化物酶学性质的研究 | 第36-40页 |
3.4 山银花采后最佳干燥方法确定 | 第40-46页 |
3.4.1 不同干燥方法对山银花外观性状的影响 | 第40-41页 |
3.4.2 不同干燥方法对山银花相关酶活性的影响 | 第41-42页 |
3.4.3 线性关系考察 | 第42页 |
3.4.4 不同干燥方法对山银花活性成分的影响 | 第42-44页 |
3.4.5 不同干燥方法活性成分含量同相关酶活性的相关分析 | 第44-46页 |
4 结论 | 第46-47页 |
4.1 山银花PPO的纯化与酶学特性 | 第46页 |
4.2 山银花POD酶学特性 | 第46页 |
4.3 最佳干燥方法的确定 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-55页 |
致谢 | 第55-56页 |
攻读学位期间发表论文目录 | 第56页 |