| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略语 | 第11-17页 |
| 第一部分：三维nHAP/COL支架的表征与体外生物相容性的研究 | 第17-34页 |
| 1 前言 | 第17-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-21页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第18页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第18-19页 |
| 2.2 构建nHAP/COL支架 | 第19页 |
| 2.3 SEM观察 | 第19页 |
| 2.4 支架孔隙率的测定 | 第19页 |
| 2.5 膨胀率、吸水率的测定 | 第19页 |
| 2.6 机械性能测试 | 第19-20页 |
| 2.7 降解性分析 | 第20页 |
| 2.8 体外生物相容性检测 | 第20-21页 |
| 2.8.1 细胞接种 | 第20页 |
| 2.8.2 细胞形态学观察 | 第20页 |
| 2.8.3 细胞计数法检测细胞早期粘附情况 | 第20-21页 |
| 2.8.4 CCK-8法检测细胞增殖 | 第21页 |
| 2.8.5 ALP活性检测 | 第21页 |
| 2.9 统计学分析 | 第21页 |
| 3 结果 | 第21-31页 |
| 3.1 nHAP/COL支架的大体观察 | 第21-22页 |
| 3.2 扫描电镜观察支架表面形貌 | 第22-23页 |
| 3.3 机械性能 | 第23-25页 |
| 3.3.1 孔隙率、膨胀率与吸水率 | 第23-24页 |
| 3.3.2 压缩强度及压缩模量 | 第24-25页 |
| 3.4 降解性能 | 第25-27页 |
| 3.4.1 SEM观察 | 第25-26页 |
| 3.4.2 降解液的PH值测定 | 第26-27页 |
| 3.4.3 降解率的测定 | 第27页 |
| 3.5 体外生物相容性的检测 | 第27-31页 |
| 3.5.1 细胞形态观察 | 第27-28页 |
| 3.5.2 BMSCs粘附率的测定 | 第28-29页 |
| 3.5.3 nHAP-COL支架促进BMSCs的增殖 | 第29-30页 |
| 3.5.4 ALP的活性测定 | 第30-31页 |
| 4 讨论 | 第31-33页 |
| 5 结论 | 第33-34页 |
| 第二部分：bFGF复合BMP-2双因子修饰的nHAP/COL支架与BMSCs共同培养的实验研究 | 第34-51页 |
| 1 前言 | 第34-35页 |
| 2 材料与方法 | 第35-39页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第35-36页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第35页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第35-36页 |
| 2.2 构建bFGF/BMP-2/nHAP/COL支架 | 第36页 |
| 2.2.1 大鼠鼠尾胶原的提取 | 第36页 |
| 2.2.2 bFGF、BMP-2、COL、nHAP共同冻干构建双因子复合支架 | 第36页 |
| 2.3 测试bFGF、BMP-2在bFGF/BMP-2/nHAP/COL支架中的释放 | 第36-37页 |
| 2.4 大鼠BMSCs的分离、培养、传代 | 第37页 |
| 2.5 流式细胞检测法鉴定BMSCs | 第37页 |
| 2.6 大鼠BMSCs与bFGF/BMP-2/nHAP/COL支架的复合培养 | 第37-38页 |
| 2.7 大鼠BMSCs形态的观察 | 第38页 |
| 2.8 大鼠BMSCs于支架上粘附情况的测定 | 第38页 |
| 2.9 CCK-8法检测BMSCs在支架上的增殖情况 | 第38页 |
| 2.10 ALP法检测BMSCs在支架上的分化情况 | 第38-39页 |
| 2.11 统计学分析 | 第39页 |
| 3 结果 | 第39-48页 |
| 3.1 支架的大体形态及SEM图像 | 第39-40页 |
| 3.2 bFGF、BMP-2的释放情况 | 第40-41页 |
| 3.3 大鼠BMSCs形态 | 第41-42页 |
| 3.4 大鼠BMSCs的流式细胞学鉴定 | 第42-43页 |
| 3.5 大鼠BMSCs与bFGF/BMP-2/nHAP/COL支架共培养证实了支架的良好组织相容性 | 第43-44页 |
| 3.6 双因子释放更有效的促进大鼠BMSCs的粘附 | 第44-45页 |
| 3.7 双因子释放更有效的促进大鼠BMSCs的增殖 | 第45-46页 |
| 3.8 双因子释放更有效的促进大鼠BMSCs的分化 | 第46-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 5 结论 | 第50-51页 |
| 第三部分：bFGF复合BMP-2双因子修饰的nHAP/COL支架修复兔下颌骨缺损的实验研究 | 第51-67页 |
| 1 前言 | 第51-52页 |
| 2 材料与方法 | 第52-57页 |
| 2.1 实验动物 | 第52页 |
| 2.2 主要试剂和仪器设备 | 第52-53页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第52-53页 |
| 2.2.2 主要仪器设备 | 第53页 |
| 2.3 兔BMSCs的培养及传代 | 第53-54页 |
| 2.4 兔BMSCs的鉴定 | 第54页 |
| 2.4.1 茜素红染色法 | 第54页 |
| 2.4.2 矿化结节染色(VonKossa改良法) | 第54页 |
| 2.5 兔BMSCs的支架接种 | 第54-55页 |
| 2.6 兔下颌骨缺损模型的制备及支架植入 | 第55页 |
| 2.7 实验指标的观察 | 第55-56页 |
| 2.7.1 动物术后状态观察 | 第55-56页 |
| 2.7.2 术后3D-CT观察下颌骨缺损区 | 第56页 |
| 2.7.3 游离下颌骨标本大体观察 | 第56页 |
| 2.7.4 HE染色切片观察 | 第56页 |
| 2.8 统计学分析 | 第56-57页 |
| 3 结果 | 第57-64页 |
| 3.1 兔BMSCs诱导成骨-茜素红染色后的钙结节观察 | 第57-58页 |
| 3.1.1 VonKossa染色矿化结节观察 | 第57-58页 |
| 3.2 术后实验动物的大体观察情况 | 第58页 |
| 3.3 术后3D-CT检查结果 | 第58-61页 |
| 3.4 术后游离下颌骨缺损区的大体观察 | 第61-63页 |
| 3.5 HE染色切片观察结果 | 第63-64页 |
| 4 讨论 | 第64-66页 |
| 5 结论 | 第66-67页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-77页 |
| 综述 | 第77-93页 |
| 参考文献 | 第86-93页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第93-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
| 个人简历 | 第95页 |
