摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-10页 |
英文缩略语 | 第11-16页 |
第一部分 两种频率低强度脉冲超声波对多孔钛合金材料上成骨细胞增殖和分化的影响 | 第16-32页 |
1 前言 | 第16-18页 |
2 材料与方法 | 第18-23页 |
2.1 材料与试剂 | 第18-20页 |
2.1.1 实验材料的制备及规格 | 第18-19页 |
2.1.2 实验仪器 | 第19页 |
2.1.3 实验试剂 | 第19-20页 |
2.2 实验方法 | 第20-23页 |
2.2.1 多孔钛合金材料预处理 | 第20页 |
2.2.2 细胞培养 | 第20页 |
2.2.3 实验分组及LIPUS干预 | 第20-21页 |
2.2.4 细胞黏附实验 | 第21页 |
2.2.5 细胞增殖检测 | 第21页 |
2.2.6 流式细胞仪检测细胞周期 | 第21-22页 |
2.2.7 碱性磷酸酶活性检测 | 第22页 |
2.2.8 骨钙素含量检测 | 第22页 |
2.2.9 统计学分析 | 第22-23页 |
3 结果 | 第23-28页 |
3.1 SEM观察细胞黏附实验结果 | 第23页 |
3.2 细胞增殖活性检测结果 | 第23-24页 |
3.3 流式细胞仪检测细胞周期结果 | 第24-25页 |
3.4 ALP活性检测结果 | 第25-26页 |
3.5 OCN含量检测结果 | 第26-28页 |
4 讨论 | 第28-31页 |
5 结论 | 第31-32页 |
第二部分 两种频率低强度脉冲超声波对多孔钛合金材料修复兔下颌骨缺损的影响 | 第32-56页 |
1 前言 | 第32-34页 |
2 材料与方法 | 第34-41页 |
2.1 材料与试剂 | 第34-36页 |
2.1.1 实验动物 | 第34页 |
2.1.2 实验材料的规格 | 第34页 |
2.1.3 实验仪器 | 第34-35页 |
2.1.4 实验试剂 | 第35-36页 |
2.2 实验方法 | 第36-41页 |
2.2.1 LIPUS干预 | 第36页 |
2.2.2 实验分组 | 第36页 |
2.2.3 手术方法及术后超声波辐照 | 第36-37页 |
2.2.4 处死及取材 | 第37页 |
2.2.5 X线影像学观察 | 第37页 |
2.2.6 Micro-CT扫描 | 第37页 |
2.2.7 硬组织切磨片制备 | 第37-38页 |
2.2.8 荧光显微镜观察 | 第38页 |
2.2.9 染色 | 第38-39页 |
2.2.10 骨组织形态计量学分析 | 第39-40页 |
2.2.11 统计学分析 | 第40-41页 |
3 结果 | 第41-52页 |
3.1 X线影像学结果 | 第41页 |
3.2 Micro-CT扫描观察结果 | 第41-43页 |
3.3 荧光显微镜观察结果 | 第43-45页 |
3.4 甲苯胺蓝染色观察结果 | 第45-47页 |
3.5 亚甲基蓝-酸性品红染色观察结果 | 第47-49页 |
3.6 vonKossa染色观察结果 | 第49-52页 |
4 讨论 | 第52-55页 |
5 结论 | 第55-56页 |
第三部分 低强度脉冲超声波对多孔钛合金成骨作用的生物信息学分析预测——miRNA差异表达谱分析 | 第56-73页 |
1 前言 | 第56-58页 |
2 材料与方法 | 第58-63页 |
2.1 材料与试剂 | 第58-59页 |
2.1.1 实验材料的制备及规格 | 第58页 |
2.1.2 实验仪器 | 第58-59页 |
2.1.3 实验试剂 | 第59页 |
2.2 实验方法 | 第59-63页 |
2.2.1 多孔材料预处理 | 第59页 |
2.2.2 细胞培养 | 第59页 |
2.2.3 实验分组及LIPUS干预 | 第59-60页 |
2.2.4 高通量RNA测序 | 第60页 |
2.2.5 实时定量PCR验证测序结果 | 第60-62页 |
2.2.6 统计学分析 | 第62-63页 |
3 结果 | 第63-68页 |
3.1 高通量测序差异表达miRNA热图结果 | 第63-64页 |
3.2 差异表达RNA功能分析 | 第64-66页 |
3.3 Real-timePCR验证测序结果 | 第66-68页 |
4 讨论 | 第68-72页 |
5 结论 | 第72-73页 |
本研究创新型的自我评价 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-82页 |
综述 | 第82-101页 |
参考文献 | 第92-101页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第101-102页 |
致谢 | 第102-103页 |
个人简历 | 第103页 |