| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-28页 |
| 1.1 单核苷酸多态性(SNP)简介及其发展应用 | 第12-16页 |
| 1.1.1 单核苷酸多态性的简介(SNP) | 第12-13页 |
| 1.1.2 SNP的分型检测种类 | 第13-14页 |
| 1.1.3 SNP的关联性分析 | 第14-15页 |
| 1.1.4 SNP在水产养殖动物中的应用 | 第15-16页 |
| 1.2 牙鲆、弧菌病及其研究进展 | 第16-18页 |
| 1.3 丝氨酸蛋白酶I-1(SP I-1)的研究进展 | 第18-21页 |
| 1.3.1 丝氨酸蛋白酶的结构和功能 | 第18页 |
| 1.3.2 丝氨酸蛋白酶的进化 | 第18-19页 |
| 1.3.3 免疫系统中的丝氨酸蛋白酶 | 第19-21页 |
| 1.4 溶菌酶基因的研究进展 | 第21-27页 |
| 1.4.1 溶菌酶的简介 | 第21-22页 |
| 1.4.2 溶菌酶的分类分布 | 第22-23页 |
| 1.4.3 溶菌酶的组织分布 | 第23-24页 |
| 1.4.4 溶菌酶具有的基因组结构特点 | 第24-25页 |
| 1.4.5 溶菌酶的进化问题 | 第25-26页 |
| 1.4.6 g型、c型、i型溶菌酶的结构特征及其功能 | 第26-27页 |
| 1.5 本实验的研究目的、意义和方案设计 | 第27-28页 |
| 第二章 牙鲆丝氨酸蛋白酶I-1基因的多态性研究 | 第28-53页 |
| 2.1 引言 | 第28-29页 |
| 2.2 材料与方法 | 第29-40页 |
| 2.2.1 牙鲆样品材料及鳗弧菌菌株 | 第29页 |
| 2.2.2 主要实验试剂及实验设计引物 | 第29-30页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第30-40页 |
| 2.3 结果 | 第40-50页 |
| 2.3.1 PoSP I-1 CDS的扩增及SNP的查找筛选 | 第40-42页 |
| 2.3.2 PoSP I-1 启动子区的多态性 | 第42-44页 |
| 2.3.3 牙鲆鳗弧菌感染的结果 | 第44-46页 |
| 2.3.4 PoSP I-1多态性位点365A/G与牙鲆抗病和易感的关系 | 第46-48页 |
| 2.3.5 对照牙鲆个体、抗病牙鲆个体和易感牙鲆个体PoSP I-1 的表达分析 | 第48-50页 |
| 2.4 讨论 | 第50-53页 |
| 第三章 牙鲆c型溶菌酶基因的多态性研究 | 第53-67页 |
| 3.1 引言 | 第53-54页 |
| 3.2 材料与方法 | 第54-57页 |
| 3.2.1 牙鲆样品材料及鳗弧菌菌株 | 第54页 |
| 3.2.2 实验中涉及的实验试剂 | 第54页 |
| 3.2.3 本章所用到的引物 | 第54-55页 |
| 3.2.4 实验方法 | 第55-57页 |
| 3.3 结果 | 第57-65页 |
| 3.3.1 PolysC CDS序列的扩增及SNP筛查 | 第57-59页 |
| 3.3.2 PolysC启动子区的多态性 | 第59-61页 |
| 3.3.3 牙鲆鳗弧菌感染的结果 | 第61页 |
| 3.3.4 PolysC多态性位点140G/C与牙鲆抗病和易感的关系 | 第61-63页 |
| 3.3.5 对照个体、抗病个体和易感个体的溶菌酶基因的表达分析 | 第63-65页 |
| 3.4 讨论 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 个人简历 | 第78页 |
