| 缩写 | 第8-9页 |
| 摘要 | 第9-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第1章 文献综述 微藻光合产氢研究进展 | 第12-23页 |
| 1.1 引言 | 第13页 |
| 1.2 微藻产氢的发展 | 第13-14页 |
| 1.3 微藻产氢机理 | 第14-17页 |
| 1.3.1 关键酶 | 第15-16页 |
| 1.3.2 微藻光合产氢电子传递途径 | 第16-17页 |
| 1.4 微藻产氢限制因素 | 第17-18页 |
| 1.4.1 氢酶对氧气的敏感性 | 第17-18页 |
| 1.4.2 电子源 | 第18页 |
| 1.5 微藻产氢策略 | 第18-20页 |
| 1.5.1 提高氢酶的耐氧性 | 第18页 |
| 1.5.2 降低细胞内氧气含量 | 第18-20页 |
| 1.5.3 提高产氢体系内的电子源 | 第20页 |
| 1.6 活性氧影响微藻光合制氢 | 第20-21页 |
| 1.7 芬顿反应 | 第21-22页 |
| 1.8 研究目的及意义 | 第22-23页 |
| 第2章 集胞藻6803高产氢突变株筛选体系的建立 | 第23-35页 |
| 2.1 引言 | 第24页 |
| 2.2 材料和方法 | 第24-28页 |
| 2.2.1 细胞培养条件 | 第24-25页 |
| 2.2.2 突变体库质粒提取 | 第25页 |
| 2.2.3 集胞藻6803的转化 | 第25页 |
| 2.2.4 集胞藻6803总DNA的提取 | 第25页 |
| 2.2.5 突变株的筛选 | 第25-26页 |
| 2.2.6 基因插入位点鉴定 | 第26页 |
| 2.2.7 同源重组载体的构建及分子鉴定 | 第26-27页 |
| 2.2.8 突变株的转录水平鉴定 | 第27页 |
| 2.2.9 叶绿素荧光参数的测定 | 第27-28页 |
| 2.2.10 光系统II放氧活性的测定 | 第28页 |
| 2.2.11 产氢积累量测定 | 第28页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第28-35页 |
| 2.3.1 高产氢突变株筛选体系的建立 | 第28-29页 |
| 2.3.2 突变株转座子插入位点的鉴定 | 第29-30页 |
| 2.3.3 Δft1突变株的构建及整合度鉴定 | 第30-31页 |
| 2.3.4 WT及Δft1在NaHSO_3背景下的Fv/Fm检测 | 第31-32页 |
| 2.3.5 WT及Δft1在NaHSO_3背景下的光合放氧速率检测 | 第32-33页 |
| 2.3.6 Δft1促进了集胞藻6803的光合产氢 | 第33-35页 |
| 第3章 突变株Δft1减缓NaHSO_3胁迫的分子机制 | 第35-45页 |
| 3.1 引言 | 第36页 |
| 3.2 材料与方法 | 第36-40页 |
| 3.2.1 细胞生长曲线测定 | 第36页 |
| 3.2.2 集胞藻6803叶绿素浓度测定 | 第36-37页 |
| 3.2.3 检测细胞内铁离子含量 | 第37页 |
| 3.2.4 细胞内总活性氧含量检测 | 第37页 |
| 3.2.5 细胞内H_2O_2含量的检测 | 第37-38页 |
| 3.2.6 细胞内羟自由基含量的检测 | 第38-40页 |
| 3.3 实验结果 | 第40-45页 |
| 3.3.1 FT1缺失对NaHSO_3胁迫下生长速率的影响 | 第40页 |
| 3.3.2 FT1缺失对铁离子吸收的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.3 FT1缺失对NaHSO_3胁迫下总活性氧含量的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.4 FT1缺失对NaHSO_3胁迫下H_2O_2含量的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.5 FT1缺失对NaHSO_3胁迫下OH·含量的影响 | 第43-45页 |
| 第4章 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
