| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第16-37页 |
| 1.1 引言 | 第16-17页 |
| 1.2 木材形成的生物学过程 | 第17-25页 |
| 1.2.1 维管组织的形成与调控 | 第18-23页 |
| 1.2.2 激素在维管系统发育过程中的作用 | 第23-25页 |
| 1.3 木材形成研究的实验系统 | 第25-28页 |
| 1.3.1 细胞离体培养系统 | 第25-26页 |
| 1.3.2 拟南芥（Arabidopsis thaliana）系统 | 第26-27页 |
| 1.3.3 创伤系统 | 第27-28页 |
| 1.4 木材形成研究的基因组学方法 | 第28-30页 |
| 1.4.1 ESTs比较分析 | 第28-29页 |
| 1.4.2 基因表达系列分析 | 第29页 |
| 1.4.3 转录组测序分析 | 第29-30页 |
| 1.5 木材形成的蛋白质组学研究 | 第30-35页 |
| 1.5.1 基于质谱的定量蛋白质组学技术 | 第32-35页 |
| 1.6 本论文研究的目的意义和技术路线 | 第35-37页 |
| 第二章 材料与方法 | 第37-49页 |
| 2.1 试验材料 | 第37-38页 |
| 2.2 主要仪器和试剂 | 第38页 |
| 2.3 再生过程显微观察 | 第38-39页 |
| 2.4 再生样品蛋白质提取 | 第39-40页 |
| 2.5 蛋白质浓度测定 | 第40页 |
| 2.6 蛋白质聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第40-41页 |
| 2.7 凝胶染色 | 第41-42页 |
| 2.8 ITRAQ标记蛋白样品 | 第42-43页 |
| 2.8.1 样品准备和蛋白酶解 | 第42页 |
| 2.8.2 iTRAQ标记 | 第42-43页 |
| 2.9 一维强阳离子（SCX）色谱分离 | 第43-44页 |
| 2.9.1 试剂准备 | 第43页 |
| 2.9.2 色谱条件 | 第43页 |
| 2.9.3 分析程序 | 第43-44页 |
| 2.9.4 收集产物脱盐 | 第44页 |
| 2.10二维反相（RP）色谱分离 | 第44-45页 |
| 2.10.1 试剂准备 | 第44-45页 |
| 2.10.2 色谱条件 | 第45页 |
| 2.10.3 分析程序 | 第45页 |
| 2.11 PROBOT点样过程 | 第45-46页 |
| 2.12 MALDI-TOF/TOF MS/MS质谱鉴定 | 第46-47页 |
| 2.12.1 峰图参数设置 | 第46页 |
| 2.12.2 数据库检索 | 第46-47页 |
| 2.13生物信息学分析 | 第47-49页 |
| 第三章 结果与分析 | 第49-67页 |
| 3.1 总蛋白的提取 | 第49-50页 |
| 3.2 二维色谱分离效果 | 第50-52页 |
| 3.3 ITRAQ定量信息获取过程 | 第52-53页 |
| 3.4 毛白杨次生维管组织蛋白表达谱 | 第53-57页 |
| 3.5 毛白杨次生维管系统发育相关蛋白质分析 | 第57-67页 |
| 3.5.1 根据蛋白质的表达部位分析 | 第57-64页 |
| 3.5.2 根据蛋白质的分子功能分类 | 第64-67页 |
| 第四章 讨论 | 第67-81页 |
| 4.1 强阳离子色谱（SCX）-反相色谱（RP）色谱分离系统 | 第67-68页 |
| 4.2 毛白杨次生维管再生过程的蛋白表达谱 | 第68-70页 |
| 4.3 次生维管系统组成部位特异蛋白分析 | 第70-76页 |
| 4.3.1 维管形成层形成相关蛋白 | 第70-72页 |
| 4.3.2 木质部形成相关蛋白 | 第72-74页 |
| 4.3.3 细胞壁形成相关蛋白 | 第74-76页 |
| 4.4 细胞信号转导相关蛋白分析 | 第76-78页 |
| 4.5 转录因子相关蛋白分析 | 第78-79页 |
| 4.6 次生维管系统发育过程模型图 | 第79-81页 |
| 第五章 结论和展望 | 第81-84页 |
| 5.1 结论 | 第81-82页 |
| 5.2 展望 | 第82-84页 |
| 参考文献 | 第84-101页 |
| 附录 | 第101-122页 |
| 缩略词 | 第122-124页 |
| 在读期间的学术研究 | 第124-125页 |
| 致谢 | 第125-127页 |
| 详细摘要 | 第127-129页 |
