摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-9页 |
缩略词表 | 第10-12页 |
1 前言 | 第12-23页 |
1.1 课题的提出 | 第12页 |
1.2 前人研究进展 | 第12-17页 |
1.2.1 类胡萝卜素的结构、分类和功能 | 第12-13页 |
1.2.2 类胡萝卜素的合成途径 | 第13-14页 |
1.2.3 调控类胡萝卜素合成的转录因子 | 第14-17页 |
1.2.4 其他调控类胡萝卜素的基因 | 第17页 |
1.3 PIF转录因子 | 第17-21页 |
1.3.1 PIF家族及其基本特征 | 第18-20页 |
1.3.2 PIF介导的植物光敏色素信号途径 | 第20页 |
1.3.3 PIF参与的植物生长发育 | 第20-21页 |
1.4 本研究的内容、目的与意义 | 第21-23页 |
2 材料与方法 | 第23-29页 |
2.1 实验材料 | 第23-24页 |
2.1.1 植物材料 | 第23页 |
2.1.2 菌株、质粒和载体 | 第23页 |
2.1.3 主要试剂和仪器设备 | 第23-24页 |
2.2 实验方法 | 第24-29页 |
2.2.1 RNA提取 | 第24页 |
2.2.2 DNA提取 | 第24页 |
2.2.3 引物合成、PCR扩增、电泳 | 第24页 |
2.2.4 PCR扩增产物的克隆与测序 | 第24-25页 |
2.2.5 质粒DNA的提取(碱裂解法) | 第25页 |
2.2.6 序列分析 | 第25页 |
2.2.7 植物超量表达载体pBI121-CsPIF构建 | 第25-26页 |
2.2.8 Real time RT-PCR分析 | 第26-27页 |
2.2.9 不同光质处理国庆一号愈伤组织和转色期果实 | 第27页 |
2.2.10 类胡萝卜素的HPLC测定 | 第27-29页 |
3 结果与分析 | 第29-43页 |
3.1 PIF基因克隆与序列分析 | 第29-37页 |
3.1.1 PIF基因克隆 | 第29-35页 |
3.1.2 CsPIF基因序列分析 | 第35-37页 |
3.2 不同器官、组织部位CsPIF基因表达量分析 | 第37-38页 |
3.3 不同光质对国庆一号温州蜜柑愈伤组织及转色期果皮总CsPIF、CsPIFL、CsPIFS及PSY基因表达量的影响 | 第38-40页 |
3.4 不同光质对国庆一号温州蜜柑愈伤组织及转色期果皮总类胡萝卜素含量的影响 | 第40-41页 |
3.5 超表达载体构建 | 第41-43页 |
4 讨论 | 第43-46页 |
4.1 不同组织、器官中CsPIF表达量差异可能受环境影响 | 第43页 |
4.2 CsPIF基因是否能够调控PSY的表达 | 第43-45页 |
4.3 基于本研究的后续工作 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-52页 |
附表1:10925探针序列 | 第52-53页 |
附表2:orange 1.1g012387m.g | 第53-56页 |
附表3:CSPIFL基因的核苷酸序列 | 第56-57页 |
附表4:CSPIFS基因的核苷酸序列 | 第57-58页 |
致谢 | 第58页 |