| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-9页 |
| 主要英文缩略词表 | 第9-10页 |
| 第一章 引言 | 第10-26页 |
| ·γ-亚麻酸研究进展 | 第10-18页 |
| ·Y-亚麻酸 | 第10-11页 |
| ·多不饱和脂肪酸 | 第10页 |
| ·多不饱和脂肪酸的分类及功能 | 第10-11页 |
| ·γ-亚麻酸的代谢途径及其生物学功能 | 第11-15页 |
| ·γ-亚麻酸在生物体内的代谢过程 | 第11-12页 |
| ·γ-亚麻酸及其衍生物的生物学功能 | 第12-15页 |
| ·γ-亚麻酸的生物来源 | 第15-18页 |
| ·γ-亚麻酸的植物来源 | 第15-16页 |
| ·γ-亚麻酸的微生物来源 | 第16-17页 |
| ·利用基因工程技术生产γ-亚麻酸 | 第17-18页 |
| ·Δ6-脂肪酸脱氢酶基因的研究进展 | 第18-22页 |
| ·Δ6-脂肪酸脱氢酶的结构与功能 | 第18-20页 |
| ·Δ6-脂肪酸脱氢酶的结构 | 第18-20页 |
| ·Δ6-脂肪酸脱氢酶基因的功能 | 第20页 |
| ·Δ6-脂肪酸脱氢酶基因的克隆与表达 | 第20-22页 |
| ·亚麻基因工程研究进展 | 第22-26页 |
| ·亚麻组织培养技术的研究进展 | 第23页 |
| ·亚麻转基因技术的研究进展 | 第23-26页 |
| 第二章 亚麻组织培养再生体系的建立 | 第26-34页 |
| ·实验材料与方法 | 第26-29页 |
| ·材料 | 第26-27页 |
| ·供体植物材料 | 第26页 |
| ·植物培养基 | 第26-27页 |
| ·植物激素 | 第27页 |
| ·方法 | 第27-29页 |
| ·无菌苗的获得 | 第27页 |
| ·亚麻组织培养外植体的选择 | 第27页 |
| ·愈伤组织及不定芽的诱导 | 第27-28页 |
| ·生根培养 | 第28页 |
| ·再生植株的移栽 | 第28-29页 |
| ·结果与分析 | 第29-30页 |
| ·不同激素配比对愈伤组织及不定芽诱导的影响 | 第29-30页 |
| ·不同激素配比对再生芽生根的影响 | 第30页 |
| ·讨论 | 第30-34页 |
| ·植物材料 | 第30-32页 |
| ·组织培养过程中玻璃苗的发生及防治 | 第32-33页 |
| ·玻璃化的概念 | 第32页 |
| ·玻璃化苗的控制与克服措施 | 第32-33页 |
| ·培养基中添加的其他成分 | 第33-34页 |
| ·活性炭 | 第33页 |
| ·硝酸银 | 第33-34页 |
| 第三章 农杆菌遗传转化亚麻体系的确立 | 第34-57页 |
| ·材料与方法 | 第34-41页 |
| ·材料 | 第34-35页 |
| ·供体植物材料 | 第34页 |
| ·菌种与质粒 | 第34-35页 |
| ·植物培养基 | 第35页 |
| ·试剂 | 第35页 |
| ·检测引物 | 第35页 |
| ·方法 | 第35-38页 |
| ·农杆菌感受态的制备 | 第35-36页 |
| ·冻融法将质粒pPZP221(35S-GUS-NOS)导入农杆菌AGL1 | 第36页 |
| ·转化子的筛选 | 第36页 |
| ·转化子的筛选与测序 | 第36页 |
| ·菌体PCR检测 | 第36-37页 |
| ·抗生素敏感性测验 | 第37-38页 |
| ·农杆菌介导的亚麻遗传转化体系的优化 | 第38-41页 |
| ·农杆菌转化菌液的制备 | 第38页 |
| ·农杆菌转化亚麻下胚轴、子叶节条件的选择 | 第38页 |
| ·外植体的制备及预培养 | 第38-39页 |
| ·农杆菌转化 | 第39页 |
| ·脱菌处理 | 第39-40页 |
| ·不定芽的诱导 | 第40页 |
| ·再生植株的获得 | 第40页 |
| ·再生植株的移栽 | 第40页 |
| ·转化植株的PCR检测 | 第40-41页 |
| ·结果与讨论 | 第41-57页 |
| ·转化菌的鉴定 | 第41-42页 |
| ·抗生素敏感性测定 | 第42-53页 |
| ·不同浓度Gen对亚麻下胚轴生长的影响 | 第42-46页 |
| ·不同浓度Gen对亚麻子叶节生长的影响 | 第46-48页 |
| ·不同浓度Cef对农杆菌AGL1的抑制实验 | 第48-53页 |
| ·转化植株的DNA检测 | 第53-57页 |
| ·亚麻基因组DNA的提取 | 第53页 |
| ·转化植株的PCR检测 | 第53-54页 |
| ·农杆菌转化实验结果 | 第54-57页 |
| 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-67页 |
| 致谢 | 第67页 |