| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 本文所用英文缩写词表 | 第16-17页 |
| 第1章 绪论 | 第17-45页 |
| 引言 | 第17页 |
| 1.1 荧光探针 | 第17-22页 |
| 1.1.1 有机小分子染料 | 第17-20页 |
| 1.1.2 荧光蛋白 | 第20-21页 |
| 1.1.3 荧光纳米材料 | 第21-22页 |
| 1.2 纳米荧光探针及生化分析应用 | 第22-30页 |
| 1.2.1 纳米荧光探针简介 | 第22-23页 |
| 1.2.2 纳米荧光探针在生化分析中的应用 | 第23-30页 |
| 1.3 DNA介导合成的纳米荧光探针概述 | 第30-42页 |
| 1.3.1 DNA作为纳米荧光探针合成模板的基础及优势 | 第30-31页 |
| 1.3.2 DNA-纳米荧光探针研究概况 | 第31-35页 |
| 1.3.3 DNA-纳米荧光探针在生化分析中的应用 | 第35-42页 |
| 1.4 本文构思 | 第42-44页 |
| 1.5 本论文研究内容结构图 | 第44-45页 |
| 第2章 poly(AT-TA)依赖双链DNA-荧光铜纳米颗粒的合成及性质研究 | 第45-56页 |
| 2.1 前言 | 第45-46页 |
| 2.2 实验部分 | 第46-49页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第46-49页 |
| 2.2.2 溶液配置 | 第49页 |
| 2.2.3 双链DNA-铜纳米颗粒的合成 | 第49页 |
| 2.2.4 双链DNA-铜纳米颗粒的表征 | 第49页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第49-55页 |
| 2.3.1 实验原理 | 第49-50页 |
| 2.3.2 双链DNA-铜纳米颗粒合成对序列组成的依赖性考察 | 第50-51页 |
| 2.3.3 外界环境对双链DNA-铜纳米颗粒合成的影响 | 第51-53页 |
| 2.3.4 poly(AT-TA)长度对双链DNA-铜纳米颗粒合成的影响 | 第53-55页 |
| 2.4 本章小结 | 第55-56页 |
| 第3章 双链DNA-荧光铜纳米颗粒作为一种“绿色”纳米染料用于聚合酶和汞离子的免标记传感研究 | 第56-69页 |
| 3.1 前言 | 第56-57页 |
| 3.2 实验部分 | 第57-60页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第57-59页 |
| 3.2.2 溶液配置 | 第59页 |
| 3.2.3 聚合酶检测 | 第59页 |
| 3.2.4 汞离子检测 | 第59-60页 |
| 3.2.5 电泳表征 | 第60页 |
| 3.2.6 双链DNA-铜纳米颗粒的合成及表征 | 第60页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第60-68页 |
| 3.3.1 实验原理 | 第60-61页 |
| 3.3.2 聚合酶检测可行性 | 第61-63页 |
| 3.3.3 聚合酶检测条件优化 | 第63-64页 |
| 3.3.4 聚合酶定量检测及选择性考察 | 第64-65页 |
| 3.3.5 聚合酶抑制剂筛选 | 第65-66页 |
| 3.3.6 汞离子检测原理 | 第66-67页 |
| 3.3.7 汞离子检测能力 | 第67-68页 |
| 3.4 本章小结 | 第68-69页 |
| 第4章 哑铃型DNA介导合成的铜纳米颗粒作为一种纳米荧光探针用于连接修复相关酶的检测研究 | 第69-88页 |
| 4.1 前言 | 第69-70页 |
| 4.2 实验部分 | 第70-74页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第70-72页 |
| 4.2.2 溶液配置 | 第72-73页 |
| 4.2.3 铜纳米颗粒的合成及表征 | 第73页 |
| 4.2.4 T4连接酶检测 | 第73页 |
| 4.2.5 T4多核苷酸激酶检测 | 第73页 |
| 4.2.6 碱性磷酸酶检测 | 第73页 |
| 4.2.7 凝胶电泳分析 | 第73-74页 |
| 4.2.8 细胞提取液制备 | 第74页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第74-87页 |
| 4.3.1 原理设计 | 第74页 |
| 4.3.2 哑铃型DNA-铜纳米颗粒的合成及表征 | 第74-76页 |
| 4.3.3 实验条件优化 | 第76-79页 |
| 4.3.4 哑铃型DNA-铜纳米颗粒对T4连接酶的检测 | 第79-81页 |
| 4.3.5 哑铃型DNA-铜纳米颗粒对T4多核苷酸激酶的检测 | 第81-83页 |
| 4.3.6 细胞提取液中对靶标分析能力 | 第83-85页 |
| 4.3.7 扩展至碱性磷酸酶的检测 | 第85-87页 |
| 4.4 本章小结 | 第87-88页 |
| 第5章 单链DNA介导荧光金纳米簇的快速合成及其汞离子免标记检测研究 | 第88-104页 |
| 5.1 前言 | 第88-89页 |
| 5.2 实验部分 | 第89-92页 |
| 5.2.1 试剂与仪器 | 第89-91页 |
| 5.2.2 溶液配置 | 第91页 |
| 5.2.3 DNA-金纳米簇的合成 | 第91页 |
| 5.2.4 DNA-金纳米簇的表征 | 第91-92页 |
| 5.2.5 离子检测 | 第92页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第92-103页 |
| 5.3.1 实验原理 | 第92-93页 |
| 5.3.2 用于金纳米簇合成的单链模板序列筛选 | 第93-96页 |
| 5.3.3 合成条件对金纳米簇荧光性质的影响 | 第96-97页 |
| 5.3.4 聚胞嘧啶长度对金纳米簇荧光性质的影响 | 第97-100页 |
| 5.3.5 DNA-金纳米簇对汞离子的检测 | 第100-102页 |
| 5.3.6 实际水样中汞离子检测能力 | 第102-103页 |
| 5.4 本章小结 | 第103-104页 |
| 第6章 基于DNA介导合成的荧光金纳米簇和类芬顿反应用于铜离子免标记检测研究 | 第104-114页 |
| 6.1 前言 | 第104-105页 |
| 6.2 实验部分 | 第105-107页 |
| 6.2.1 试剂与仪器 | 第105-106页 |
| 6.2.2 溶液配置 | 第106页 |
| 6.2.3 DNA-金纳米簇合成 | 第106-107页 |
| 6.2.4 DNA-金纳米簇表征 | 第107页 |
| 6.2.5 铜离子检测 | 第107页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第107-113页 |
| 6.3.1 实验原理 | 第107-108页 |
| 6.3.2 DNA-金纳米簇的表征 | 第108-109页 |
| 6.3.3 铜离子检测可行性考察 | 第109-110页 |
| 6.3.4 铜离子检测条件优化 | 第110-111页 |
| 6.3.5 铜离子检测灵敏度考察 | 第111页 |
| 6.3.6 铜离子检测特异性考察 | 第111-112页 |
| 6.3.7 实际样品中铜离子检测能力考察 | 第112-113页 |
| 6.4 本章小结 | 第113-114页 |
| 结论 | 第114-116页 |
| 参考文献 | 第116-136页 |
| 附录 攻读博士学位期间已完成的学术论文 | 第136-139页 |
| 致谢 | 第139-140页 |
