| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略语表 | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-19页 |
| 参考文献 | 第16-19页 |
| 第二章 hPDLCs的原代培养与鉴定 | 第19-26页 |
| 2.1 材料和方法 | 第19-22页 |
| 2.1.1 主要实验试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.2 实验仪器设备 | 第20页 |
| 2.1.3 试剂的配置 | 第20页 |
| 2.1.4 hPDLCs的原代培养 | 第20-21页 |
| 2.1.5 hPDLCs形态学观察 | 第21页 |
| 2.1.6 hPDLCs的细胞鉴定 | 第21-22页 |
| 2.2 结果 | 第22-24页 |
| 2.2.1 原代培养hPDLCs的形态学观察 | 第22页 |
| 2.2.2 原代培养hPDLCs来源的鉴定 | 第22-24页 |
| 2.3 讨论 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-26页 |
| 第三章 LIRA对h PDLCs增殖和迁移能力的影响 | 第26-35页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第26-28页 |
| 3.1.1 主要实验试剂 | 第26-27页 |
| 3.1.2 实验仪器设备 | 第27页 |
| 3.1.3 主要试剂的配置 | 第27页 |
| 3.1.4 qRT-PCR | 第27页 |
| 3.1.5 MTT实验 | 第27-28页 |
| 3.1.6 划痕试验 | 第28页 |
| 3.1.7 统计学分析 | 第28页 |
| 3.2 结果 | 第28-32页 |
| 3.2.1 hPDLCs上GLP-1R的表达 | 第28-29页 |
| 3.2.2 LIRA可促进hPDLCs的增殖 | 第29页 |
| 3.2.3 低浓度的LPS可促进hPDLCs的增殖，而高浓度的LPS则抑制hPDLCs的增殖 | 第29-30页 |
| 3.2.4 LIRA对LPS干预下hPDLCs增殖的影响 | 第30-31页 |
| 3.2.5 LIRA增强hPDLCs的迁移能力 | 第31-32页 |
| 3.3 讨论 | 第32-34页 |
| 参考文献 | 第34-35页 |
| 第四章 LIRA对LPS干预下hPDLCs炎症的影响 | 第35-41页 |
| 4.1 实验过程及材料方法 | 第35-37页 |
| 4.1.1 主要实验试剂 | 第35-36页 |
| 4.1.2 实验仪器设备 | 第36页 |
| 4.1.3 qRT-PCR检测炎症因子mRNA的表达 | 第36页 |
| 4.1.4 Western Blot检测炎症因子蛋白的表达 | 第36-37页 |
| 4.2 结果 | 第37-38页 |
| 4.3 讨论 | 第38-40页 |
| 参考文献 | 第40-41页 |
| 第五章 LIRA对LPS干预下hPDLCs成骨分化的影响 | 第41-46页 |
| 5.1 实验过程及材料方法 | 第41-42页 |
| 5.1.1 主要实验试剂 | 第41页 |
| 5.1.2 实验仪器设备 | 第41页 |
| 5.1.3 qRT-PCR检测成骨因子mRNA的表达 | 第41-42页 |
| 5.1.4 Western Blot检测成骨因子蛋白的表达 | 第42页 |
| 5.2 结果 | 第42-43页 |
| 5.3 讨论 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-46页 |
| 第六章 全文总结 | 第46-47页 |
| 在校期间的科研成果 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 临床病例 | 第49-64页 |
| 病例报告1 | 第49-56页 |
| 1 临床资料和方法 | 第50-52页 |
| 2 结果 | 第52页 |
| 3 讨论 | 第52-55页 |
| 参考文献 | 第55-56页 |
| 病例报告2 | 第56-64页 |
| 1 临床资料和方法 | 第57-61页 |
| 2 结果 | 第61-63页 |
| 3 讨论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64页 |
