中文摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
第一章 绪言 | 第16-38页 |
1.1 两种乌头属植物的形态与分布 | 第16-18页 |
1.1.1 乌头形态与分布 | 第16-17页 |
1.1.2 北乌头形态与分布 | 第17-18页 |
1.2 川乌 | 第18-20页 |
1.2.1 川乌的性状 | 第18页 |
1.2.2 川乌的化学成分 | 第18-19页 |
1.2.3 川乌的生物活性 | 第19-20页 |
1.3 附子 | 第20-31页 |
1.3.1 附子的性状 | 第20-21页 |
1.3.1.1 盐附子 | 第21页 |
1.3.1.2 黑顺片 | 第21页 |
1.3.1.3 白附片 | 第21页 |
1.3.2 附子的化学成分 | 第21-25页 |
1.3.3 附子的生物活性 | 第25-31页 |
1.3.3.1 强心作用 | 第25-27页 |
1.3.3.2 镇痛作用 | 第27-28页 |
1.3.3.3 抗炎作用 | 第28页 |
1.3.3.4 免疫活性 | 第28-29页 |
1.3.3.5 抗肿瘤作用 | 第29-30页 |
1.3.3.6 抗衰老作用 | 第30页 |
1.3.3.7 抗休克作用 | 第30页 |
1.3.3.8 抗哮喘作用 | 第30-31页 |
1.3.3.9 保肝作用 | 第31页 |
1.3.3.10 其他作用 | 第31页 |
1.4 草乌 | 第31-34页 |
1.4.1 草乌的性状 | 第32页 |
1.4.2 草乌的化学成分 | 第32-33页 |
1.4.3 草乌的生物活性 | 第33-34页 |
1.5 三种药材中生物碱类成分小结 | 第34-36页 |
1.6 毒性 | 第36-37页 |
1.7 研究目的与内容 | 第37-38页 |
第二章 附子中双酯型乌头碱类成分的提取与分离 | 第38-50页 |
2.1 前言 | 第38页 |
2.2 实验部分 | 第38-40页 |
2.2.1 材料与仪器 | 第38-39页 |
2.2.1.1 试剂和药材 | 第38页 |
2.2.1.2 实验仪器 | 第38-39页 |
2.2.2 附子中双酯型乌头碱类成分的提取与分离 | 第39-40页 |
2.3 双酯型乌头碱成分的结构鉴定 | 第40-48页 |
2.3.1 化合物1的结构鉴定 | 第40-42页 |
2.3.2 化合物2的结构鉴定 | 第42-44页 |
2.3.3 化合物3的结构鉴定 | 第44-46页 |
2.3.4 化合物4的结构鉴定 | 第46-48页 |
2.4 小结 | 第48-50页 |
第三章 单酯型乌头碱及乌头原碱的制备 | 第50-100页 |
3.1 前言 | 第50页 |
3.2 实验部分 | 第50-55页 |
3.2.1 试剂与原料 | 第50-51页 |
3.2.2 实验仪器 | 第51页 |
3.2.3 乌头碱的水解 | 第51-52页 |
3.2.4 新乌头碱的水解 | 第52-53页 |
3.2.5 次乌头碱的水解 | 第53-54页 |
3.2.6 脱氧乌头碱的水解 | 第54-55页 |
3.3 双酯型乌头碱降解产物的结构鉴定 | 第55-97页 |
3.3.1 化合物5的结构鉴定及~(13)C、~1H信号归属 | 第55-60页 |
3.3.2 化合物6的结构鉴定及~(13)C、~1H信号归属 | 第60-64页 |
3.3.3 化合物7的结构鉴定及~(13)C、~1H信号归属 | 第64-68页 |
3.3.4 化合物8的结构鉴定及~(13)C、~1H信号归属 | 第68-71页 |
3.3.5 化合物9的结构鉴定及~(13)C、~1H信号归属 | 第71-75页 |
3.3.6 化合物10的结构鉴定及~(13)C、~1H信号归属 | 第75-78页 |
3.3.7 化合物11的结构鉴定及~(13)C、~1H信号归属 | 第78-82页 |
3.3.8 化合物12的结构鉴定及~(13)C、~1H信号归属 | 第82-87页 |
3.3.9 化合物13的结构鉴定及~(13)C、~1H信号归属 | 第87-90页 |
3.3.10 化合物14的结构鉴定及~(13)C、~1H信号归属 | 第90-95页 |
3.3.11 化合物15的结构鉴定及~(13)C、~1H信号归属 | 第95-97页 |
3.4 小结 | 第97-100页 |
第四章 乌头碱类成分的提取与测定 | 第100-130页 |
4.1 乌头类药材中乌头碱的测定 | 第100-112页 |
4.1.1 前言 | 第100页 |
4.1.2 实验方法 | 第100-102页 |
4.1.2.1 药材 | 第100页 |
4.1.2.2 试剂 | 第100-101页 |
4.1.2.3 色谱条件 | 第101页 |
4.1.2.4 供试品溶液制备 | 第101-102页 |
4.1.2.5 标准储备液的制备 | 第102页 |
4.1.3 结果与讨论 | 第102-112页 |
4.1.3.1 测定波长的选择 | 第102页 |
4.1.3.2 色谱柱和流动相的选择 | 第102-103页 |
4.1.3.3 提取条件的选择 | 第103-105页 |
4.1.3.4 检测限 | 第105页 |
4.1.3.5 线性范围 | 第105-107页 |
4.1.3.6 精密度 | 第107页 |
4.1.3.7 稳定性 | 第107-108页 |
4.1.3.8 重复性 | 第108-109页 |
4.1.3.9 加样回收率 | 第109-111页 |
4.1.3.10 样品分析 | 第111-112页 |
4.2 基质固相分散法提取草乌中双酯型生物碱 | 第112-128页 |
4.2.1 前言 | 第112-113页 |
4.2.2 实验部分 | 第113-115页 |
4.2.2.1 试剂和药材 | 第113-114页 |
4.2.2.2 色谱条件 | 第114页 |
4.2.2.3 标准储备液制备 | 第114页 |
4.2.2.4 供试品溶液的制备 | 第114-115页 |
4.2.3 结果与讨论 | 第115-128页 |
4.2.3.1 检测限、定量限和线性 | 第115-116页 |
4.2.3.2 精密度 | 第116-117页 |
4.2.3.3 基质固相提取条件的优化 | 第117-124页 |
4.2.3.4 稳定性 | 第124-125页 |
4.2.3.5 重复性 | 第125-126页 |
4.2.3.6 回收率 | 第126-128页 |
4.2.3.7 基质固相分散体取法与回流提取法比较 | 第128页 |
4.3 小结 | 第128-130页 |
第五章 三种单脂型乌头碱对大鼠佐剂性关节炎的治疗作用 | 第130-138页 |
5.1 前言 | 第130页 |
5.2 实验部分 | 第130-132页 |
5.2.1 实验动物 | 第130页 |
5.2.2 仪器与试剂 | 第130-131页 |
5.2.3 实验方法 | 第131-132页 |
5.3 实验结果 | 第132-137页 |
5.3.1 原发性足肿胀 | 第132-134页 |
5.3.2 继发性足肿胀 | 第134-136页 |
5.3.3 对佐剂性关节炎大鼠血沉及白细胞计数的影响 | 第136页 |
5.3.4 对佐剂性关节炎大鼠自由基的影响 | 第136-137页 |
5.4 小结 | 第137-138页 |
参考文献 | 第138-150页 |
附录 | 第150-232页 |
作者简介 | 第232-234页 |
在学期间发表的学术论文 | 第234-236页 |
致谢 | 第236页 |