摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
一、文献综述 | 第10-22页 |
1 黄酮类化合物 | 第10-15页 |
1.1 黄酮类化合物的功能结构与分类 | 第10页 |
1.2 黄酮在植物体中的生物学功能 | 第10-11页 |
1.2.1 抵御昆虫以及病原微生物 | 第10-11页 |
1.2.2 参与植物UV-B逆境胁迫 | 第11页 |
1.2.3 控制植物的花色 | 第11页 |
1.3 黄酮在动物体中的生物学功能 | 第11-12页 |
1.4 植物黄酮的合成代谢途径 | 第12-15页 |
1.4.1 苯丙烷类代谢途径 | 第12-13页 |
1.4.2 黄酮醇和花青素生物合成的共同途径 | 第13-14页 |
1.4.3 黄酮醇合成支路 | 第14-15页 |
1.4.4 花青素合成途径 | 第15页 |
2 LED光源在植物栽培种的应用 | 第15-19页 |
2.1 光照与植物 | 第15-16页 |
2.1.1 光对植物的影响 | 第16页 |
2.1.2 光质与色素 | 第16页 |
2.2 应用于植物栽培的LED特征 | 第16-17页 |
2.2.1 LED简介 | 第16-17页 |
2.2.2 LED光源的优点 | 第17页 |
2.3 LED光源在植物组织培养中的应用 | 第17-18页 |
2.3.1 红光(620—660nm)和远红光(710—740nm)LED对组培植物生长的影响 | 第17-18页 |
2.3.2 蓝光(450—470 nm)LED对组培植物生长的影响 | 第18页 |
2.4 LED应用于植物设施栽培的前景分析 | 第18-19页 |
3 苦荞简介 | 第19-20页 |
3.1 荞麦的种类和分布 | 第19页 |
3.2 苦荞中的黄酮 | 第19-20页 |
3.3 苦荞的开发利用现状 | 第20页 |
4 本研究的目的和内容 | 第20-22页 |
4.1 立项依据 | 第20-21页 |
4.2 目的和意义 | 第21页 |
4.3 技术路线 | 第21-22页 |
二、材料和方法 | 第22-27页 |
2.1 材料 | 第22页 |
2.1.1 植物材料的选择 | 第22页 |
2.1.2 主要试剂盒和试剂 | 第22页 |
2.1.3 主要仪器 | 第22页 |
2.1.4 主要溶液 | 第22页 |
2.2 方法 | 第22-27页 |
2.2.1 苦荞种子的催芽 | 第22-23页 |
2.2.2 光质的选择 | 第23页 |
2.2.3 引物的设计 | 第23-24页 |
2.2.4 各个处理组苦荞子叶和胚轴RNA的提取 | 第24-25页 |
2.2.5 苦荞子叶和胚轴RNA的检测 | 第25页 |
2.2.6 各个处理组苦荞子叶和胚轴cDNA第一条链的制备 | 第25页 |
2.2.7 苦荞子叶和胚轴总黄酮的提取与测定 | 第25-27页 |
2.2.8 数据分析 | 第27页 |
三、结果与分析 | 第27-38页 |
3.1 不同光质对苦荞幼苗生长的影响 | 第27-28页 |
3.2 苦荞子叶和胚轴总RNA的检测 | 第28-29页 |
3.3 苦荞黄酮合成相关基因的表达量分析 | 第29-37页 |
3.3.1 FtPAL表达量分析 | 第29-30页 |
3.3.2 FtC4L表达量分析 | 第30页 |
3.3.3 Ft4CL表达量分析 | 第30-31页 |
3.3.4 FtCHS表达量分析 | 第31-32页 |
3.3.5 FtCHI表达量分析 | 第32页 |
3.3.6 FtF3H表达量分析 | 第32-33页 |
3.3.7 FtF3'H表达量分析 | 第33-34页 |
3.3.8 FtFLS表达量分析 | 第34-35页 |
3.3.9 FtDFR表达量分析 | 第35-36页 |
3.3.10 FtANS表达量分析 | 第36-37页 |
3.4 不同LED光源与苦荞黄酮积累 | 第37-38页 |
3.4.1 芦丁标准曲线的建立 | 第37页 |
3.4.2 苦荞子叶和胚轴中总黄酮的测定 | 第37-38页 |
3.5 苦荞黄酮合成相关基因与黄酮积累的相关性 | 第38页 |
四、讨论 | 第38-43页 |
4.1 芽期苦荞中总黄酮 | 第38-39页 |
4.2 不同光质与黄酮的关系 | 第39-40页 |
4.3 黄酮合成途径中关键酶基因表达与黄酮积累 | 第40-43页 |
参考文献 | 第43-49页 |
致谢 | 第49页 |
攻读硕士期间发表的文章 | 第49页 |