| 学位论文数据集 | 第3-4页 |
| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 目录 | 第9-12页 |
| Contents | 第12-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-25页 |
| 1.1 课题的研究背景及研究意义 | 第15-16页 |
| 1.2 纳米材料的发展 | 第16-17页 |
| 1.2.1 纳米材料的定义及特性 | 第16页 |
| 1.2.2 纳米材料的分类及应用 | 第16页 |
| 1.2.3 纳米毒理学研究 | 第16-17页 |
| 1.2.4 纳米材料对活性污泥系统的影响 | 第17页 |
| 1.3 SBR工艺 | 第17-20页 |
| 1.3.1 SBR工艺基本运行模式 | 第18-19页 |
| 1.3.2 生物脱氮机理 | 第19-20页 |
| 1.3.3 生物除磷机理 | 第20页 |
| 1.4 微生物群落研究进展 | 第20-23页 |
| 1.4.1 传统培养方法 | 第21页 |
| 1.4.2 生物标记物方法 | 第21页 |
| 1.4.3 群落生理学指纹法 | 第21-22页 |
| 1.4.4 现代分子生物学方法 | 第22-23页 |
| 1.5 课题的研究目的、研究内容及技术路线 | 第23-25页 |
| 1.5.1 课题的研究目的 | 第23页 |
| 1.5.2 课题的研究内容 | 第23-24页 |
| 1.5.3 课题的技术路线 | 第24-25页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第25-35页 |
| 2.1 实验装置与材料 | 第25-27页 |
| 2.1.1 实验装置与仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.2 实验材料 | 第26-27页 |
| 2.1.3 实验用水来源及水质 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-33页 |
| 2.2.1 CuO NPs悬浊液制备 | 第27页 |
| 2.2.2 活性污泥的驯化 | 第27-28页 |
| 2.2.3 CuO NPs短期暴露实验 | 第28-29页 |
| 2.2.4 呼吸抑制试验 | 第29-31页 |
| 2.2.5 CuO NPs长期暴露实验 | 第31页 |
| 2.2.6 微生物群落的研究 | 第31-33页 |
| 2.2.6.1 污泥样品的收集 | 第31页 |
| 2.2.6.2 活性污泥DNA提取 | 第31-32页 |
| 2.2.6.3 DNA浓度的测定 | 第32页 |
| 2.2.6.4 DNA电泳检测鉴定 | 第32页 |
| 2.2.6.5 PCR扩增、纯化及测序 | 第32-33页 |
| 2.3 分析测定项目、方法及仪器 | 第33-35页 |
| 第三章 CuO NPs对SBR水处理效果的影响 | 第35-49页 |
| 3.1 CuO NPs短期暴露对SBR水处理效果的影响 | 第35-40页 |
| 3.1.1 不同浓度CuO NPs对SBR短期运行冲击的周期内影响 | 第35-38页 |
| 3.1.2 不同浓度CuO NPs对SBR短期运行营养物质去除的影响 | 第38-40页 |
| 3.2 CuO NPs对污泥的呼吸抑制研究 | 第40-41页 |
| 3.2.1 活性污泥的呼吸抑制试验 | 第40-41页 |
| 3.3 CuO NPs长期暴露对SBR水处理效果的影响 | 第41-48页 |
| 3.3.1 不同浓度CuO NPs对SBR长期运行营养物质去除的影响 | 第42-45页 |
| 3.3.2 不同浓度CuO NPs对SBR长期运行后周期内影响 | 第45-48页 |
| 3.4 小结 | 第48-49页 |
| 第四章 CuO NPs对SBR中微生物群落的影响 | 第49-65页 |
| 4.1 DNA浓度及纯度 | 第49-51页 |
| 4.2 PCR扩增 | 第51-52页 |
| 4.3 Miseq测序 | 第52-53页 |
| 4.4 细菌群落组成和分析 | 第53-64页 |
| 4.4.1 OTU分类 | 第53页 |
| 4.4.2 多样性指数 | 第53-57页 |
| 4.4.3 分类学分析 | 第57-64页 |
| 4.5 小结 | 第64-65页 |
| 第五章 结论 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第75-77页 |
| 导师及作者简介 | 第77-79页 |
| 附件 | 第79-80页 |
