| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 缩略词表（Abbreviation） | 第12-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-39页 |
| 1 稻曲病的地理分布与危害 | 第14-15页 |
| 1.1 稻曲病的地理分布 | 第14页 |
| 1.2 稻曲病的危害 | 第14-15页 |
| 2 稻曲病的发病症状 | 第15-16页 |
| 3 稻曲病菌的病原学 | 第16-18页 |
| 3.1 稻曲病菌的命名 | 第16页 |
| 3.2 稻曲病菌的生物学特征 | 第16-17页 |
| 3.3 稻曲病菌的分离培养 | 第17-18页 |
| 4 稻曲病的侵染循环 | 第18-19页 |
| 4.1 初侵染源 | 第18-19页 |
| 4.2 侵染时期和侵染途径 | 第19页 |
| 5 稻曲病的发病条件 | 第19-21页 |
| 5.1 品种抗病性 | 第20页 |
| 5.2 气候条件 | 第20-21页 |
| 5.3 栽培管理 | 第21页 |
| 5.4 田间菌量 | 第21页 |
| 6 稻曲病的防治 | 第21-25页 |
| 6.1 农业防治 | 第21-22页 |
| 6.2 生物防治 | 第22-23页 |
| 6.3 化学防治 | 第23-25页 |
| 7 真菌群体遗传多样性研究 | 第25-29页 |
| 7.1 真菌群体遗传多样性 | 第25页 |
| 7.2 群体遗传多样性研究方法 | 第25-29页 |
| 8 植物病原真菌抗DMI类杀菌剂的分子机理研究 | 第29-38页 |
| 8.1 细胞色素P450 | 第30页 |
| 8.2 真菌甾醇 14α-脱甲基化酶（CYP51）催化机理 | 第30-31页 |
| 8.3 麦角甾醇合成抑制剂 | 第31-32页 |
| 8.4 抗DMI杀菌剂分子机理 | 第32-35页 |
| 8.5 DMI药剂与CYP51 蛋白相互作用的研究 | 第35-38页 |
| 9 论文研究目的与思路 | 第38-39页 |
| 第二章 湖北省水稻稻曲病菌多样性研究 | 第39-62页 |
| 1 引言 | 第39-40页 |
| 2 材料与方法 | 第40-46页 |
| 2.1 供试菌株 | 第40-41页 |
| 2.2 主要实验仪器 | 第41-43页 |
| 2.3 主要试剂及耗材 | 第43页 |
| 2.4 相关培养基 | 第43页 |
| 2.5 引物 | 第43页 |
| 2.6 菌株的分离培养与保存 | 第43-44页 |
| 2.7 基因组DNA的提取 | 第44页 |
| 2.8 随机多态性（RAPD）扩增 | 第44-45页 |
| 2.9 RAPD图谱分析 | 第45页 |
| 2.10 单核苷酸多态性（SNP） | 第45-46页 |
| 2.11 群体遗传分析 | 第46页 |
| 3 结果与分析 | 第46-58页 |
| 3.1 随机引物的筛选 | 第46-47页 |
| 3.2 同一块田来自相同水稻品种上菌株的遗传多样性 | 第47-49页 |
| 3.3 基于RAPD分子标记的110株菌株的遗传多样性 | 第49-53页 |
| 3.4 基于SNP分子标记的110株菌株的遗传多样性 | 第53-56页 |
| 3.5 群体遗传分析 | 第56-58页 |
| 4 结论与讨论 | 第58-62页 |
| 第三章 稻曲病菌对DMI类杀菌剂的抗药性分析 | 第62-99页 |
| 1 引言 | 第62-63页 |
| 2 材料与方法 | 第63-81页 |
| 2.1 供试菌株和载体 | 第63-64页 |
| 2.2 主要实验仪器 | 第64页 |
| 2.3 主要试剂及耗材 | 第64-65页 |
| 2.4 相关培养基及试剂的配制 | 第65-67页 |
| 2.5 基因组DNA的提取 | 第67-68页 |
| 2.6 RNA的提取与cDNA的合成 | 第68-69页 |
| 2.7 VvCYP51 基因的克隆 | 第69-71页 |
| 2.8 紫外诱变菌株 | 第71-73页 |
| 2.9 表达载体的构建 | 第73-74页 |
| 2.10 农杆菌感受态细胞的制备 | 第74页 |
| 2.11 农杆菌的电转 | 第74-75页 |
| 2.12 农杆菌介导的稻曲菌转化 | 第75页 |
| 2.13 转化子对DMI类杀菌剂戊唑醇的EC50的测定 | 第75-76页 |
| 2.14 VvCYP51 表达量的测定 | 第76页 |
| 2.15 菌落生长速度、产孢量和孢子萌发率的测定 | 第76-77页 |
| 2.16 分子对接 | 第77页 |
| 2.17 稻曲菌CYP51 的生物信息学分析预测 | 第77页 |
| 2.18 原核重组表达质粒的构建 | 第77-78页 |
| 2.19 重组蛋白的原核表达及表达产物的SDS-PAGE分析 | 第78-79页 |
| 2.20 稻曲病菌CYP51 重组蛋白（Vv CYP51）的制备 | 第79页 |
| 2.21 蛋白的定量 | 第79页 |
| 2.22 蛋白免疫印迹杂交（Western Blot） | 第79-80页 |
| 2.23 重组蛋白同戊唑醇结合光谱的测定 | 第80页 |
| 2.24 统计分析 | 第80-81页 |
| 3 结果与分析 | 第81-95页 |
| 3.1 VvCYP51 基因的克隆 | 第81-83页 |
| 3.2 紫外诱变突变体的产生 | 第83页 |
| 3.3 Y137H点突变对戊唑醇抗药性的影响 | 第83-85页 |
| 3.4 VvCYP51 可由戊唑醇诱导但是并没有对戊唑醇抗药性产生影响 | 第85-86页 |
| 3.5 含Y137H点突变的突变体和转化子的适应性 | 第86-88页 |
| 3.6 野生型和突变型VvCYP51 的同源建模 | 第88页 |
| 3.7 分子对接 | 第88-91页 |
| 3.8 稻曲病菌CYP51 跨膜结构分析 | 第91-92页 |
| 3.9 蛋白免疫印迹杂交 | 第92-93页 |
| 3.10 蛋白含量测定：牛血清蛋白的标准曲线 | 第93页 |
| 3.11 结合光谱分析戊唑醇与VvCYP51 的结合 | 第93-95页 |
| 4 结论与讨论 | 第95-99页 |
| 第四章 全文总结与展望 | 第99-102页 |
| 1 结论和创新点 | 第99-101页 |
| 1.1 全文结论 | 第99-100页 |
| 1.2 主要创新点 | 第100-101页 |
| 2 研究展望 | 第101-102页 |
| 参考文献 | 第102-121页 |
| 附录 | 第121-132页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第132-133页 |
| 致谢 | 第133-135页 |
