| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略词表 | 第11-15页 |
| 1 引言 | 第15-21页 |
| 2 材料和方法 | 第21-32页 |
| 2.1 材料 | 第21-26页 |
| 2.1.1 病例来源及临床病理资料 | 第21页 |
| 2.1.2 组织样本 | 第21-24页 |
| 2.1.2.1 用于lnc RNA芯片筛选的组织样本 | 第21-22页 |
| 2.1.2.2 用于q RT-PCR验证的组织样本 | 第22-24页 |
| 2.1.3 胃癌细胞株 | 第24-26页 |
| 2.2 方法 | 第26-32页 |
| 2.2.1 组织总RNA抽提 | 第26-27页 |
| 2.2.2 RNA质量检测 | 第27-28页 |
| 2.2.2.1 RNA浓度及纯度的测定 | 第27-28页 |
| 2.2.2.2 RNA完整性检测 | 第28页 |
| 2.2.3 Lnc RNA芯片杂交 | 第28页 |
| 2.2.4 芯片洗涤与扫描 | 第28页 |
| 2.2.5 芯片数据的采集及分析 | 第28-29页 |
| 2.2.6 Lnc RNA q RT-PCR验证 | 第29-31页 |
| 2.2.6.1 引物设计 | 第29-30页 |
| 2.2.6.2 Lnc RNA逆转录反应 | 第30页 |
| 2.2.6.3 Lnc RNA q RT-PCR反应 | 第30-31页 |
| 2.2.6.4 分析荧光定量结果 | 第31页 |
| 2.2.7 统计学方法 | 第31-32页 |
| 3 实验结果 | 第32-60页 |
| 3.1 总RNA的提取和质控 | 第32-33页 |
| 3.2 Lnc RNA芯片初筛结果: | 第33-40页 |
| 3.3 芯片结果在组织和细胞株中的q RT-PCR定量验证 | 第40-43页 |
| 3.4 对芯片筛选结果中差异表达m RNAs的GO分析结果 | 第43-53页 |
| 3.5 对芯片筛选结果中差异表达m RNAs的Pathway分析结果 | 第53-56页 |
| 3.6 TUG1 的临床意义 | 第56-60页 |
| 3.6.1 72 例胃癌患者的临床相关资料 | 第56页 |
| 3.6.2 TUG1 的表达水平与临床病理因素的相关性 | 第56-58页 |
| 3.6.3 TUG1 的表达水平与胃癌患者预后的关系 | 第58-60页 |
| 4 讨论 | 第60-66页 |
| 5 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 攻读学位期间发表的文章 | 第77-79页 |
| 综述 | 第79-97页 |
| 参考文献 | 第89-97页 |
