| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-22页 |
| 研究现状、成果 | 第13-20页 |
| 研究目的、方法 | 第20-22页 |
| 一、miR-544与结肠癌临床病理因素的关系 | 第22-30页 |
| 1.1 对象和方法 | 第22-24页 |
| 1.1.1 对象 | 第22页 |
| 1.1.2 试剂 | 第22页 |
| 1.1.3 实验仪器 | 第22-23页 |
| 1.1.4 实验方法 | 第23-24页 |
| 1.1.4.1 miRNA的提取 | 第23页 |
| 1.1.4.2 miRNA的逆转录 | 第23-24页 |
| 1.1.4.3 qPCR扩增miRNA | 第24页 |
| 1.1.4.4 统计学分析 | 第24页 |
| 1.2 结果 | 第24-27页 |
| 1.2.1 miR-544在结肠癌组织中表达上调 | 第24-25页 |
| 1.2.2 miR-544表达水平与临床病理因素的关系 | 第25-26页 |
| 1.2.3 miR-544表达水平与结肠癌患者预后的关系 | 第26-27页 |
| 1.3 讨论 | 第27-29页 |
| 1.4 小结 | 第29-30页 |
| 二、miR-544调控结肠癌进展的分子机制 | 第30-61页 |
| 2.1 对象和方法 | 第30-42页 |
| 2.1.1 对象 | 第30页 |
| 2.1.2 试剂 | 第30-31页 |
| 2.1.3 实验仪器及耗材 | 第31-32页 |
| 2.1.4 实验方法 | 第32-42页 |
| 2.1.4.1 细胞培养、传代、冻存、复苏及计数 | 第32-33页 |
| 2.1.4.2 表达质粒构建 | 第33-34页 |
| 2.1.4.3 质粒的转化、提取及及鉴定 | 第34-36页 |
| 2.1.4.4 转染 | 第36页 |
| 2.1.4.5 Western blot | 第36-40页 |
| 2.1.4.6 RT-qPCR | 第40-41页 |
| 2.1.4.7 MTT | 第41页 |
| 2.1.4.8 克隆形成 | 第41页 |
| 2.1.4.9 Transwell | 第41页 |
| 2.1.4.10 双荧光素酶实验 | 第41-42页 |
| 2.1.4.11 流式细胞术 | 第42页 |
| 2.1.4.12 统计学分析 | 第42页 |
| 2.2 结果 | 第42-53页 |
| 2.2.1 miR-544在正常组织及结肠癌细胞系中的表达水平 | 第42-43页 |
| 2.2.2 过表达miR-544促进结肠癌细胞HT29增殖和侵袭能力 | 第43-44页 |
| 2.2.3 沉默miR-544抑制结肠癌细胞HCT116增殖和侵袭能力 | 第44-47页 |
| 2.2.4 miR-544促进结肠癌细胞周期进程 | 第47-48页 |
| 2.2.5 FOXO1是miR-544下游靶基因 | 第48-51页 |
| 2.2.6 FOXO1介导miR-544对结肠癌细胞的调控作用 | 第51-52页 |
| 2.2.7 miR-544通过调控FOXO1影响PI3K/AKT信号通路 | 第52-53页 |
| 2.3 讨论 | 第53-59页 |
| 2.4 小结 | 第59-61页 |
| 全文结论 | 第61-62页 |
| 论文创新点 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-86页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第86-87页 |
| 综述 | 第87-113页 |
| 综述参考文献 | 第98-113页 |
| 致谢 | 第113-114页 |
| 个人简历 | 第114页 |
