| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第1章 绪论 | 第11-27页 |
| 1.1 引言 | 第11-12页 |
| 1.2 骨组织工程 | 第12-18页 |
| 1.2.1 骨组织工程的发展和现状 | 第12-13页 |
| 1.2.2 生物材料 | 第13-14页 |
| 1.2.3 种子细胞 | 第14-17页 |
| 1.2.4 生长因子 | 第17-18页 |
| 1.3 生物材料与干细胞 | 第18-23页 |
| 1.3.1 生物材料调控干细胞命运 | 第18-20页 |
| 1.3.2 材料的表面化学性质对干细胞成骨分化的影响 | 第20-22页 |
| 1.3.3 纳米粒子对干细胞成骨分化的影响 | 第22-23页 |
| 1.4 生物材料与生长因子 | 第23-25页 |
| 1.4.1 生长因子释放系统 | 第23-24页 |
| 1.4.2 壳聚糖作为生长因子载体 | 第24-25页 |
| 1.5 本论文的主要研究内容及创新点 | 第25-27页 |
| 1.5.1 本论文的主要研究内容 | 第25-26页 |
| 1.5.2 本论文的研究意义及创新点 | 第26-27页 |
| 第2章 等离子体聚合表面改性对人脂肪干细胞成骨分化的影响 | 第27-41页 |
| 2.1 引言 | 第27-28页 |
| 2.2 材料和方法 | 第28-32页 |
| 2.2.1 实验材料和试剂 | 第28页 |
| 2.2.2 等离子体聚合表面改性 | 第28页 |
| 2.2.3 等离子体聚合改性表面的表征 | 第28-29页 |
| 2.2.4 人脂肪干细胞的培养及分化能力鉴定 | 第29-31页 |
| 2.2.5 等离子体聚合改性表面对hASCs行为的影响 | 第31-32页 |
| 2.2.6 数据统计 | 第32页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第32-40页 |
| 2.3.1 等离子体聚合改性表面的化学性质 | 第32-34页 |
| 2.3.2 等离子体聚合改性表面的接触角 | 第34页 |
| 2.3.3 等离子体聚合改性表面的原子力显微镜观察结果 | 第34-35页 |
| 2.3.4 人脂肪干细胞的成脂和成骨分化 | 第35-36页 |
| 2.3.5 细胞形貌 | 第36-37页 |
| 2.3.6 细胞增殖 | 第37页 |
| 2.3.7 细胞成骨分化 | 第37-38页 |
| 2.3.8 分析与讨论 | 第38-40页 |
| 2.4 本章小结 | 第40-41页 |
| 第3章 等离子体聚合化学梯度表面对人脂肪干细胞分化的影响及其机理 | 第41-59页 |
| 3.1 引言 | 第41-42页 |
| 3.2 材料和方法 | 第42-46页 |
| 3.2.1 实验材料和试剂 | 第42页 |
| 3.2.2 等离子体聚合化学梯度表面的制备 | 第42-43页 |
| 3.2.3 等离子体聚合化学梯度表面的表征 | 第43页 |
| 3.2.4 蛋白吸附 | 第43-44页 |
| 3.2.5 细胞培养 | 第44页 |
| 3.2.6 Calcein-AM/PI染色 | 第44页 |
| 3.2.7 F-actin染色 | 第44-45页 |
| 3.2.8 p-ERK染色 | 第45页 |
| 3.2.9 成骨分化 | 第45页 |
| 3.2.10 成脂分化 | 第45-46页 |
| 3.2.11 数据处理 | 第46页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第46-58页 |
| 3.3.1 等离子体聚合化学梯度表面表征结果 | 第46-48页 |
| 3.3.2 蛋白吸附 | 第48-49页 |
| 3.3.3 细胞数目 | 第49-51页 |
| 3.3.4 细胞铺展 | 第51-52页 |
| 3.3.5 p-ERK染色 | 第52-53页 |
| 3.3.6 成骨分化 | 第53-54页 |
| 3.3.7 成脂分化 | 第54-55页 |
| 3.3.8 分析与讨论 | 第55-58页 |
| 3.4 本章小结 | 第58-59页 |
| 第4章 纳米银对人骨髓间充质干细胞成骨分化的影响 | 第59-74页 |
| 4.1 引言 | 第59-60页 |
| 4.2 材料与方法 | 第60-64页 |
| 4.2.1 实验材料和试剂 | 第60页 |
| 4.2.2 纳米银的制备 | 第60页 |
| 4.2.3 纳米银颗粒的表征 | 第60页 |
| 4.2.4 人骨髓间充质干细胞培养 | 第60-61页 |
| 4.2.5 纳米银作用后hMSCs的TEM观察 | 第61页 |
| 4.2.6 hMSCs成骨诱导 | 第61页 |
| 4.2.7 CCK-8 分析 | 第61页 |
| 4.2.8 细胞周期分析 | 第61-62页 |
| 4.2.9 碱性磷酸酶活性分析 | 第62页 |
| 4.2.10 实时荧光定量RT-PCR | 第62-63页 |
| 4.2.11 骨桥蛋白染色 | 第63页 |
| 4.2.12 茜素红染色 | 第63页 |
| 4.2.13 数据处理 | 第63-64页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第64-73页 |
| 4.3.1 纳米银的表征 | 第64页 |
| 4.3.2 纳米银的细胞摄取 | 第64-66页 |
| 4.3.3 细胞活性 | 第66-67页 |
| 4.3.4 细胞周期 | 第67-69页 |
| 4.3.5 细胞成骨分化 | 第69-73页 |
| 4.4 本章小结 | 第73-74页 |
| 第5章 接枝BMP-2 多肽壳聚糖/羟基磷灰石支架的制备与表征 | 第74-87页 |
| 5.1 引言 | 第74-75页 |
| 5.2 巯基化壳聚糖的制备和表征 | 第75-78页 |
| 5.2.1 材料与方法 | 第75-77页 |
| 5.2.2 结果与讨论 | 第77-78页 |
| 5.3 BMP-2 多肽的表征 | 第78-81页 |
| 5.3.1 材料和方法 | 第78-79页 |
| 5.3.2 结果与讨论 | 第79-81页 |
| 5.4 接枝BMP-2 多肽壳聚糖/羟基磷灰石支架的制备和表征 | 第81-86页 |
| 5.4.1 材料和方法 | 第81-82页 |
| 5.4.2 结果与讨论 | 第82-86页 |
| 5.5 本章小结 | 第86-87页 |
| 第6章 巯基化壳聚糖基温敏性凝胶用于载BMP-2 多肽 | 第87-101页 |
| 6.1 引言 | 第87-88页 |
| 6.2 材料和方法 | 第88-90页 |
| 6.2.1 实验材料和试剂 | 第88页 |
| 6.2.2 巯基化壳聚糖基温敏性凝胶的制备 | 第88页 |
| 6.2.3 凝胶的扫描电镜观察 | 第88页 |
| 6.2.4 凝胶的化学组分分析 | 第88-89页 |
| 6.2.5 流变学分析 | 第89页 |
| 6.2.6 凝胶的体外降解 | 第89页 |
| 6.2.7 凝胶的体外细胞毒性 | 第89页 |
| 6.2.8 体外载蛋白释放 | 第89-90页 |
| 6.2.9 体外载BMP-2 多肽P24释放行为 | 第90页 |
| 6.2.10 数据处理 | 第90页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第90-100页 |
| 6.3.1 凝胶形成 | 第90-92页 |
| 6.3.2 CS-TBA/β-GP/HA凝胶的内部形貌 | 第92页 |
| 6.3.3 CS-TBA/β-GP/HA凝胶的化学组分 | 第92-94页 |
| 6.3.4 流变学性能 | 第94-95页 |
| 6.3.5 凝胶的体外降解 | 第95-97页 |
| 6.3.6 凝胶的体外细胞毒性 | 第97-98页 |
| 6.3.7 体外载蛋白释放 | 第98-99页 |
| 6.3.8 体外载BMP-2 多肽P24释放 | 第99-100页 |
| 6.4 本章小结 | 第100-101页 |
| 第7章 结论 | 第101-103页 |
| 参考文献 | 第103-121页 |
| 致谢 | 第121-123页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第123-124页 |
