| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-23页 |
| 1.1 小麦杂种优势利用 | 第11-14页 |
| 1.1.1 小麦杂种优势利用概述 | 第11-12页 |
| 1.1.2 小麦杂种优势利用主要途径 | 第12-14页 |
| 1.2 植物雄性不育机理研究 | 第14-18页 |
| 1.2.1 植物雄性不育的细胞学研究 | 第14-15页 |
| 1.2.2 植物雄性不育生理生化研究 | 第15-17页 |
| 1.2.3 植物雄性不育的分子机理研究 | 第17-18页 |
| 1.3 植物花药绒毡层的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.3.1 绒毡层发育过程及其作用 | 第18页 |
| 1.3.2 植物绒毡层异常导致花粉败育的机理研究 | 第18-19页 |
| 1.4 植物天冬氨酸蛋白酶的研究进展 | 第19-22页 |
| 1.4.1 植物天冬氨酸蛋白酶的结构特征与功能 | 第19-20页 |
| 1.4.2 植物天冬氨酸蛋白酶的生物学功能 | 第20-21页 |
| 1.4.3 天冬氨酸蛋白酶与绒毡层相互联系 | 第21-22页 |
| 1.5 本实验研究目的及其意义 | 第22-23页 |
| 第二章 化学杀雄剂SQ-1 诱导小麦雄性不育性效果分析与鉴定 | 第23-27页 |
| 2.1 材料与方法 | 第23页 |
| 2.1.1 试验材料及其处理 | 第23页 |
| 2.1.2 材料的处理 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-24页 |
| 2.2.1 育性鉴定 | 第23页 |
| 2.2.2 花药细胞学观察 | 第23-24页 |
| 2.3 实验结果与分析 | 第24-26页 |
| 2.3.1 SQ-1 诱导的植株不育率及其授粉结实率 | 第24页 |
| 2.3.2 KI-I2染色结果观察 | 第24-25页 |
| 2.3.3 DAPI染色结果观察 | 第25-26页 |
| 2.4 讨论 | 第26-27页 |
| 第三章 不同时期正常可育小麦与生理雄性不育小麦绒毡层变化 | 第27-36页 |
| 3.1 材料与方法 | 第27-29页 |
| 3.1.1 材料与处理 | 第27页 |
| 3.1.2 实验仪器与试剂 | 第27-28页 |
| 3.1.3 半薄切片的制备 | 第28页 |
| 3.1.4 超薄切片的制备与观察 | 第28-29页 |
| 3.1.5 小麦花药总RNA提取和纯化、第一条链cDNA合成 | 第29页 |
| 3.1.6 引物设计及其合成 | 第29页 |
| 3.1.7 小麦花药天冬氨酸蛋白酶基因 APS 的定量表达分析 | 第29页 |
| 3.2 结果与分析 | 第29-34页 |
| 3.3 讨论 | 第34-36页 |
| 第四章 天冬氨酸蛋白酶基因的表达量分析及其与绒毡层异常降解的相关性 | 第36-43页 |
| 4.1 材料与方法 | 第36-37页 |
| 4.1.1 材料及其处理 | 第36页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第36页 |
| 4.1.3 主要试剂的配置 | 第36-37页 |
| 4.2 实验方法 | 第37-39页 |
| 4.2.1 西农1376小麦小花蛋白酶的提取 | 第37页 |
| 4.2.2 可溶性蛋白含量测定 | 第37-38页 |
| 4.2.3 西农1376小麦总蛋白酶活性电泳分析 | 第38页 |
| 4.2.4 西农1376小麦总蛋白酶特性的分析 | 第38页 |
| 4.2.5 天冬氨酸蛋白酶的鉴别 | 第38-39页 |
| 4.2.6 可育与不育小麦小花中天冬氨酸蛋白酶活性比较与分析 | 第39页 |
| 4.3 结果与分析 | 第39-42页 |
| 4.3.1 西农1376小麦小花中总蛋白酶活性的分析 | 第39页 |
| 4.3.2 西农1376小麦小花中总蛋白酶的特性分析 | 第39-42页 |
| 4.4 讨论 | 第42-43页 |
| 第五章 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-51页 |
| 附录 | 第51-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 作者简介 | 第54页 |
