缩略词 | 第4-8页 |
中文摘要 | 第8-9页 |
Abstract | 第9页 |
1 前言 | 第10-23页 |
1.1 催乳素与催乳素受体 | 第10-11页 |
1.2 催乳素受体介导的信号通路 | 第11-13页 |
1.3 催乳素的功能 | 第13-14页 |
1.4 催乳素的释放 | 第14-15页 |
1.5 催乳素的抑制--喹高利特 | 第15-16页 |
1.6 乳腺发育与泌乳 | 第16-19页 |
1.7 催乳素与乳脂的合成 | 第19-21页 |
1.8 乳腺研究中的测序技术 | 第21-22页 |
1.9 试验目的和意义 | 第22-23页 |
2 材料和方法 | 第23-33页 |
2.1 Wistar大鼠乳腺高通量测序及q RT-PCR验证 | 第23-31页 |
2.1.1.试验动物及饲养 | 第23页 |
2.1.2 主要试验仪器及试剂 | 第23-24页 |
2.1.3 试验方法:数字基因表达谱 | 第24-29页 |
2.1.3.1 乳腺组织组织RNA提取 | 第24-25页 |
2.1.3.2 RNA品质和质量检测 | 第25页 |
2.1.3.3 测序实验流程及文库制备 | 第25页 |
2.1.3.4 信息分析流程 | 第25-26页 |
2.1.3.5 数据过滤 | 第26页 |
2.1.3.6 数据对比 | 第26页 |
2.1.3.7 测序饱和度和Reads随机性 | 第26页 |
2.1.3.8 基因定量分析 | 第26-27页 |
2.1.3.9 差异基因筛选:泊松分布方法 | 第27-28页 |
2.1.3.10 GO分析 | 第28页 |
2.1.3.11 Pathway分析 | 第28-29页 |
2.1.4 试验方法:荧光定量PCR | 第29-31页 |
2.1.4.1 总RNA的提取 | 第29页 |
2.1.4.2 RNA的品质和质量检测 | 第29页 |
2.1.4.3 反转录获得c DNA | 第29-30页 |
2.1.4.4 实时荧光定量PCR | 第30-31页 |
2.1.5 数据处理与分析 | 第31页 |
2.2 Wistar大鼠泌乳量变化 | 第31-33页 |
2.2.1 试验动物饲养 | 第31页 |
2.2.2 试验方法 | 第31页 |
2.2.3 测定指标与方法 | 第31-32页 |
2.2.4 数据处理与分析 | 第32-33页 |
3. 结果与分析 | 第33-48页 |
3.1 数字基因表达谱结果与分析 | 第33-46页 |
3.1.1 数据比对和质控 | 第33-34页 |
3.1.2 测序饱和度和Reads随机性 | 第34-35页 |
3.1.3 基因定量分析 | 第35-36页 |
3.1.4 差异表达基因的筛选 | 第36-41页 |
3.1.5 差异基因GO显著性功能富集分析 | 第41-43页 |
3.1.6 差异基因的Pathway显著性富集分析 | 第43-45页 |
3.1.7 荧光定量PCR结果 | 第45-46页 |
3.2 大鼠泌乳量结果分析 | 第46-48页 |
3.2.1 母鼠每小时泌乳量 | 第46-47页 |
3.2.2 仔鼠每窝总增重 | 第47页 |
3.2.3 大鼠血液激素水平与生化指标 | 第47-48页 |
4 讨论 | 第48-57页 |
4.1 大鼠乳腺基因的转录情况 | 第48-49页 |
4.2 喹高利特对乳脂合成的影响 | 第49-50页 |
4.3 喹高利特对细胞脂肪因子瘦素信号的影响 | 第50-51页 |
4.4 喹高利特对催乳素受体下游信号通路的影响 | 第51-52页 |
4.5 喹高利特对胰岛素信号通路的影响 | 第52页 |
4.6 喹高利特对大鼠乳腺生长发育的影响 | 第52-54页 |
4.7 喹高利特导致大鼠产后缺乳 | 第54-55页 |
4.8 大鼠泌乳量变化测量方法 | 第55-56页 |
4.9 大鼠血液指标变化 | 第56-57页 |
5 结论及研究展望 | 第57-58页 |
5.1 结论 | 第57页 |
5.2 研究展望 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-69页 |
致谢 | 第69-70页 |