| 符号说明 | 第4-10页 |
| 中文摘要 | 第10-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 1 引言 | 第13-27页 |
| 1.1 有机磷农药 | 第13-15页 |
| 1.1.1 有机磷农药简述 | 第13-14页 |
| 1.1.2 有机磷农药的毒性及对人体的危害 | 第14页 |
| 1.1.3 有机磷农药残留现状 | 第14-15页 |
| 1.2 有机磷农药的检测方法 | 第15-20页 |
| 1.2.1 色谱法 | 第15-17页 |
| 1.2.2 酶抑制法 | 第17页 |
| 1.2.3 免疫学方法 | 第17-18页 |
| 1.2.4 化学发光技术 | 第18页 |
| 1.2.5 电化学传感器 | 第18页 |
| 1.2.6 毛细管电泳 | 第18-20页 |
| 1.3 有机磷农药检测的前处理技术 | 第20-22页 |
| 1.3.1 固相萃取 | 第20页 |
| 1.3.2 超临界流体提取 | 第20页 |
| 1.3.3 基质固相分散萃取技术 | 第20页 |
| 1.3.4 固相微萃取 | 第20-21页 |
| 1.3.5 磁性固相萃取 | 第21页 |
| 1.3.6 超声波提取技术 | 第21-22页 |
| 1.4 分子印迹技术 | 第22-24页 |
| 1.4.1 分子印迹技术简介 | 第22页 |
| 1.4.2 分子印迹技术的原理 | 第22-23页 |
| 1.4.3 分子印迹聚合物的制备 | 第23-24页 |
| 1.4.3.1 本体聚合法 | 第23页 |
| 1.4.3.2 分散聚合 | 第23-24页 |
| 1.5 离子液体的概述 | 第24-26页 |
| 1.5.1 离子液体简介 | 第24页 |
| 1.5.2 离子液体在毛细管电泳中的应用 | 第24-26页 |
| 1.6 本论文的研究内容及目的意义 | 第26-27页 |
| 2 材料与方法 | 第27-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第27页 |
| 2.2 主要试剂 | 第27页 |
| 2.3 主要仪器 | 第27-28页 |
| 2.4 量子点磁性分子印迹聚合物的合成及表征 | 第28-30页 |
| 2.4.1 聚合物的合成 | 第28-30页 |
| 2.4.2 聚合物的表征 | 第30页 |
| 2.4.2.1 分子印迹聚合物的红外表征 | 第30页 |
| 2.4.2.2 扫描电镜表征 | 第30页 |
| 2.5 分子印迹磁性固相萃取-毛细管电泳检测蔬菜中敌百虫方法建立 | 第30-32页 |
| 2.5.1 敌百虫标准溶液的配制 | 第30-31页 |
| 2.5.2 农药标准曲线的绘制 | 第31页 |
| 2.5.3 电泳条件的优化 | 第31页 |
| 2.5.4 磁性固相萃取条件的优化 | 第31页 |
| 2.5.5 分子印迹磁性固相萃取-毛细管电泳检测流程 | 第31页 |
| 2.5.6 样品的准备 | 第31-32页 |
| 2.5.7 气相色谱验证 | 第32页 |
| 2.6 基于离子液体的乙酰甲胺磷和水胺硫磷分离检测方法的建立 | 第32-34页 |
| 2.6.1 毛细管柱子预处理 | 第32页 |
| 2.6.2 毛细管电泳分离条件的优化 | 第32页 |
| 2.6.3 萃取过程的优化 | 第32页 |
| 2.6.4 精密度实验 | 第32页 |
| 2.6.5 干扰实验 | 第32页 |
| 2.6.6 样品处理 | 第32-34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-59页 |
| 3.1 分子印迹聚合物的红外表征、电镜扫描以及吸附性能分析 | 第34-39页 |
| 3.1.1 分子印迹聚合物的红外表征 | 第34页 |
| 3.1.2 电镜扫描表征 | 第34-35页 |
| 3.1.3 量子点磁性分子印迹聚合物吸附性能分析 | 第35-39页 |
| 3.1.3.1 敌百虫溶液的紫外吸收标准曲线的绘制 | 第35页 |
| 3.1.3.2 静态吸附实验 | 第35-37页 |
| 3.1.3.3 Scatchard分析 | 第37-38页 |
| 3.1.3.4 吸附动力学分析 | 第38页 |
| 3.1.3.5 选择性实验 | 第38-39页 |
| 3.2 毛细管电泳条件的优化 | 第39-47页 |
| 3.2.1 检测波长的选择 | 第39页 |
| 3.2.2 电泳条件 | 第39-41页 |
| 3.2.2.1 缓冲液种类的选择 | 第39-40页 |
| 3.2.2.2 硼砂-硼酸缓冲液体系pH值的优化 | 第40页 |
| 3.2.2.3 电压的选择 | 第40-41页 |
| 3.2.3 分子印迹磁性固相萃取条件优化 | 第41-44页 |
| 3.2.3.1 聚合物添加量的优化 | 第41页 |
| 3.2.3.2 吸附时间的优化 | 第41-42页 |
| 3.2.3.3 洗脱液比例的优化 | 第42-43页 |
| 3.2.3.4 洗脱液的体积对富集效果的影响 | 第43-44页 |
| 3.2.4 方法的分析特征量 | 第44页 |
| 3.2.5 方法的选择性 | 第44-45页 |
| 3.2.6 黄瓜和菜花中敌百虫的添加回收率 | 第45-46页 |
| 3.2.7 实际样的检测 | 第46-47页 |
| 3.2.8 气相色谱验证 | 第47页 |
| 3.3 基于离子液体分离乙酰甲胺磷和水胺硫磷电泳条件优化 | 第47-53页 |
| 3.3.1 离子液体种类的优化 | 第47-48页 |
| 3.3.2 离子液体浓度的优化 | 第48-49页 |
| 3.3.3 十二烷基硫酸钠浓度的优化 | 第49-51页 |
| 3.3.4 缓冲液种类的影响 | 第51页 |
| 3.3.5 缓冲溶液pH的影响 | 第51-52页 |
| 3.3.6 电压的选择 | 第52页 |
| 3.3.7 两种农药标准曲线绘制 | 第52-53页 |
| 3.4 萃取条件的优化 | 第53-55页 |
| 3.4.1 萃取溶剂的选择 | 第53页 |
| 3.4.2 超声功率的影响 | 第53-54页 |
| 3.4.3 超声时间的影响 | 第54-55页 |
| 3.5 干扰实验 | 第55页 |
| 3.6 基于离子液体的乙酰甲胺磷和水胺硫磷的检测方法评价 | 第55-56页 |
| 3.7 方法评价和添加回收实验 | 第56-57页 |
| 3.8 实际样的检测 | 第57-58页 |
| 3.9 气相色谱验证 | 第58-59页 |
| 4 讨论 | 第59-61页 |
| 4.1 建立的两种新型检测方法的优缺点 | 第59-61页 |
| 4.1.1 分子印迹磁性固相萃取与毛细管电泳联用技术检测敌百虫的方法的优缺点 | 第59页 |
| 4.1.2 基于离子液体的乙酰甲胺磷和水胺硫磷的检测方法的优缺点 | 第59页 |
| 4.1.3 两种检测方法的分析 | 第59页 |
| 4.1.4 进一步研究方向 | 第59-61页 |
| 4.1.4.1 分子印迹识别机理的研究 | 第59-60页 |
| 4.1.4.2 离子液体的应用 | 第60-61页 |
| 5 结论 | 第61-62页 |
| 5.1 分子印迹磁性固相萃取与毛细管电泳联用检测敌百虫方法研究 | 第61页 |
| 5.2 基于离子液体的乙酰甲胺磷和水胺硫磷的检测方法研究 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 攻读硕士期间的研究成果 | 第70页 |
