| 致谢 | 第6-11页 |
| 摘要 | 第11-14页 |
| Abstract | 第14-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-32页 |
| 1.1 叶片衰老的基本特征 | 第17-18页 |
| 1.2 叶片衰老与叶绿体结构功能间的关系 | 第18-19页 |
| 1.3 叶片衰老与叶绿体PSⅡ光合功能及D1蛋白间的关系 | 第19-22页 |
| 1.4 叶片衰老过程中的活性氧产生与抗氧化保护酶变化 | 第22-25页 |
| 1.4.1 超氧阴离子(O_2~(·-))和过氧化氢(H_2O_2)的产生 | 第22-23页 |
| 1.4.2 抗氧化保护酶对ROS的调控 | 第23-25页 |
| 1.5 植物激素对叶片衰老的调控 | 第25-30页 |
| 1.5.1 叶片衰老过程中细胞分裂素(cytokinin,CK)的变化 | 第25-26页 |
| 1.5.2 叶片衰老过程中生长素(auxin,IAA)的变化 | 第26-27页 |
| 1.5.3 叶片衰老过程中脱落酸(abscisic acid,ABA)的变化 | 第27-28页 |
| 1.5.4 叶片衰老过程中乙烯(ethylene)的变化 | 第28-29页 |
| 1.5.5 植物激素对叶片衰老调控的分子机制 | 第29-30页 |
| 1.6 本课题研究的意义与内容 | 第30-32页 |
| 第二章 水稻后期旗叶早衰对籽粒充实特性及稻米品质影响 | 第32-44页 |
| 2.1 引言 | 第32页 |
| 2.2 材料与方法 | 第32-36页 |
| 2.2.1 供试材料 | 第32-34页 |
| 2.2.2 叶绿素(SPAD值)含量的测定 | 第34页 |
| 2.2.3 稻米表观直链淀粉含量的测定 | 第34页 |
| 2.2.4 籽粒糊化特性的测定 | 第34页 |
| 2.2.5 溶解度和膨胀势的测定 | 第34-35页 |
| 2.2.6 直、支链淀粉的分离与碘蓝值和最大吸收波长的测定 | 第35-36页 |
| 2.2.7 稻米中总蛋白、植酸和Zn含量的测定 | 第36页 |
| 2.3 结果与分析 | 第36-41页 |
| 2.3.1 早衰突变体psf和野生型对照的旗叶衰老速率变化与主要农艺性状差异 | 第36-37页 |
| 2.3.2 叶片衰老及其速率变化对稻米外观品质和加工品质的影响 | 第37-38页 |
| 2.3.3 叶片衰老及其速率变化对稻米蒸煮食味品质的影响 | 第38-40页 |
| 2.3.4 叶片衰老及其速率变化对稻米营养品质的影响 | 第40-41页 |
| 2.4 讨论 | 第41-44页 |
| 第三章 ABA对早衰突变体psf叶片衰老过程的调控及其与D1蛋白光损伤间关系 | 第44-70页 |
| 3.1 引言 | 第44-45页 |
| 3.2 材料与方法 | 第45-52页 |
| 3.2.1 供试材料与田间种植 | 第45页 |
| 3.2.2 田间遮光处理试验 | 第45-46页 |
| 3.2.3 离体叶片的光照、暗和ABA处理 | 第46页 |
| 3.2.4 光合速率与叶绿素含量的测定 | 第46-47页 |
| 3.2.5 叶绿素荧光参数测定 | 第47页 |
| 3.2.6 丙二醛(MDA)和脱落酸(ABA)的测定 | 第47页 |
| 3.2.7 光系统ⅡD1蛋白的western-Blotting免疫检测 | 第47-50页 |
| 3.2.7.1 膜蛋白的SDS-PAGE电泳 | 第48-49页 |
| 3.2.7.2 光系统ⅡD1蛋白的Western-Blotting的免疫印迹 | 第49-50页 |
| 3.2.8 D1蛋白的免疫胶体金标记 | 第50页 |
| 3.2.9 水稻叶片总RNA提取、反转录和定量PCR | 第50-52页 |
| 3.3 结果与分析 | 第52-66页 |
| 3.3.1 早衰突变体psf的叶片衰老动态及相关生理指标变化 | 第52-55页 |
| 3.3.2 光照因素对早衰突变体psf叶片衰老的影响及其与ABA含量间关系 | 第55-62页 |
| 3.3.3 ABA诱导的叶片衰老与叶绿体D1蛋白合成及裂解相关基因表达间关系 | 第62-66页 |
| 3.4 讨论 | 第66-70页 |
| 第四章 ROS对早衰突变体psf叶片衰老过程的生理调控及其与抗氧化保护酶变化间关系 | 第70-89页 |
| 4.1 引言 | 第70-71页 |
| 4.2 材料与方法 | 第71-74页 |
| 4.2.1 试验材料 | 第71页 |
| 4.2.2 离体水稻叶片甲基紫精(MV)的处理 | 第71-72页 |
| 4.2.3 O_2~(·-)产生速率、过氧化氢、相对电导率和MDA含量的测定 | 第72页 |
| 4.2.4 抗氧化酶活性的测定 | 第72页 |
| 4.2.5 SOD同工酶的非变性凝胶电泳 | 第72-73页 |
| 4.2.6 RNA的提取、cDNA的合成和荧光定量PCR | 第73-74页 |
| 4.3 结果与分析 | 第74-86页 |
| 4.3.1 早衰突变体psf灌浆结实期旗叶衰老与ROS变化间的关系 | 第74-75页 |
| 4.3.2 叶片衰老过程中抗氧化保护酶的变化以及与ROS积累间的关系 | 第75-78页 |
| 4.3.3 抗氧化保护酶与ROS介导的叶片衰老间的关系 | 第78-81页 |
| 4.3.4 叶片衰老过程中ROS产生对SOD同工酶转录与蛋白表达的影响 | 第81-83页 |
| 4.3.5 离体叶片中不同SOD同工酶对MV诱导的ROS爆发响应 | 第83-86页 |
| 4.4 讨论 | 第86-89页 |
| 第五章 糖饥饿对早衰突变体psf叶片衰老过程的调控及其与ABA间的关系 | 第89-103页 |
| 5.1 引言 | 第89-91页 |
| 5.2 材料与方法 | 第91-93页 |
| 5.2.1 试验材料与田间种植 | 第91页 |
| 5.2.2 水稻离体叶片糖饥饿处理 | 第91页 |
| 5.2.3 水稻离体叶片的蔗糖处理 | 第91-92页 |
| 5.2.4 叶片糖分含量测定 | 第92页 |
| 5.2.5 叶绿素含量的测定 | 第92页 |
| 5.2.6 水稻叶片总RNA的抽提与cDNA的合成 | 第92页 |
| 5.2.7 调控ABA合成与分解的关键酶基因引物的设计 | 第92-93页 |
| 5.3 结果与分析 | 第93-101页 |
| 5.3.1 早衰突变体psf旗叶衰老过程的糖类含量变化及其与野生型间差异 | 第93-94页 |
| 5.3.2 糖饥饿对叶片衰老的调控及其对ABA含量的影响 | 第94-95页 |
| 5.3.3 糖饥饿处理对叶片内源糖和ABA含量的影响 | 第95-96页 |
| 5.3.4 水稻旗叶衰老过程中调控ABA合成与分解代谢关键基因的表达动态 | 第96页 |
| 5.3.5 糖饥饿条件下调控ABA合成与分解代谢关键基因的表达 | 第96-98页 |
| 5.3.6 外源糖处理对叶片衰老和ABA含量的调控 | 第98-100页 |
| 5.3.7 糖处理条件下调控ABA合成与分解代谢关键基因的表达 | 第100-101页 |
| 5.4 讨论 | 第101-103页 |
| 第六章 生长素(IAA)对早衰突变体psf叶片衰老过程的调控作用 | 第103-118页 |
| 6.1 引言 | 第103-104页 |
| 6.2 材料与方法 | 第104-106页 |
| 6.2.1 供试材料的种植 | 第104页 |
| 6.2.2 IAA和共轭型IAA(吲哚乙酰天冬氨酸(IAA-ASP))含量的测定 | 第104页 |
| 6.2.3 离体叶片的NAA处理 | 第104-105页 |
| 6.2.4 RNA的提取、cDNA的合成和荧光定量PCR | 第105页 |
| 6.2.5 荧光定量qRT-PCR引物的设计与数据分析 | 第105-106页 |
| 6.3 结果与分析 | 第106-115页 |
| 6.3.1 早衰突变体psf旗叶衰老过程的IAA含量和组成变化及其与野生型间差异 | 第106-107页 |
| 6.3.2 调控IAA合成代谢与共轭作用关键基因在叶片衰老过程的表达变化 | 第107-109页 |
| 6.3.3 IAA信号响应基因在叶片衰老过程中的表达变化 | 第109-110页 |
| 6.3.4 转录因子NAC在叶片衰老过程中的表达变化 | 第110-112页 |
| 6.3.5 外源NAA处理对离体叶片衰老的调控 | 第112-115页 |
| 6.4 讨论 | 第115-118页 |
| 第七章 全文总结与展望 | 第118-122页 |
| 参考文献 | 第122-137页 |
| 攻读博士学位期间发表的文章 | 第137页 |
