中文摘要 | 第12-14页 |
ABSTRACT | 第14-16页 |
第一章 文献综述 | 第17-37页 |
1.1 植物中硫化氢气体信号的研究进展 | 第17-24页 |
1.1.1 动植物体内硫化氢的来源 | 第17-20页 |
1.1.2 植物体内硫化氢的作用 | 第20-22页 |
1.1.3 植物体内硫化氢对胁迫的响应 | 第22-24页 |
1.2 植物中重金属镉信号的研究进展 | 第24-33页 |
1.2.1 活性氧簇 | 第25-27页 |
1.2.2 生理功能的气体信号分子 | 第27-30页 |
1.2.3 植物激素 | 第30-31页 |
1.2.4 其它 | 第31-33页 |
1.3 谷子响应重金属镉的研究进展 | 第33-35页 |
1.3.1 谷子镉污染现状 | 第33-34页 |
1.3.2 谷子抗性的研究进展 | 第34-35页 |
1.4 课题研究的内容及意义 | 第35-37页 |
1.4.1 本研究的目的和意义 | 第35页 |
1.4.2 本研究的主要内容 | 第35-37页 |
第二章 镉胁迫对谷子幼苗生长的氧化损伤 | 第37-48页 |
2.1 材料与方法 | 第37-42页 |
2.1.1 试验材料与生长条件 | 第37-38页 |
2.1.2 试验设计 | 第38页 |
2.1.3 生理指标的测定 | 第38-41页 |
2.1.4 叶片过氧化氢组织化学染色 | 第41页 |
2.1.5 根尖细胞死亡的检测 | 第41页 |
2.1.6 数据分析 | 第41-42页 |
2.3 结果与分析 | 第42-45页 |
2.3.1 低浓度长时间镉胁迫对谷子幼苗生长状态的影响 | 第42-43页 |
2.3.2 低浓度长时间镉胁迫对谷子幼苗生理指标的影响 | 第43页 |
2.3.3 低浓度长时间镉胁迫对谷子幼苗抗氧化酶系统的影响 | 第43-44页 |
2.3.4 高浓度短时间镉胁迫对谷子幼苗生长状态的影响 | 第44-45页 |
2.3.5 高浓度短时间镉胁迫对谷子幼苗抗氧化酶系统的影响 | 第45页 |
2.4 讨论 | 第45-48页 |
第三章 硫化氢通过抑制谷子幼苗NADPH氧化酶响应镉胁迫 | 第48-57页 |
3.1 材料与方法 | 第48-52页 |
3.1.1 试验材料与生长条件 | 第48页 |
3.1.2 试验设计 | 第48-49页 |
3.1.3 内源硫化氢含量和产率的测定 | 第49-50页 |
3.1.4 光合速率的测量 | 第50页 |
3.1.5 电解质渗透的测定 | 第50页 |
3.1.6 叶片过氧化氢含量的测定 | 第50页 |
3.1.7 NADPH氧化酶活性的测定 | 第50页 |
3.1.8 基因转录水平的分析 | 第50-52页 |
3.1.9 数据分析 | 第52页 |
3.2 结果与分析 | 第52-56页 |
3.2.1 内源硫化氢对镉胁迫的响应 | 第52-53页 |
3.2.2 外源硫化氢对谷子幼苗耐受镉的影响 | 第53-54页 |
3.2.3 外源硫化氢对镉诱导过氧化氢产生的影响 | 第54页 |
3.2.4 外源硫化氢对NADPH氧化酶编码基因表达的影响 | 第54-55页 |
3.2.5 外源硫化氢对金属硫蛋白编码基因表达的影响 | 第55-56页 |
3.3 讨论 | 第56-57页 |
第四章 硫化氢和脯氨酸协同缓解谷子幼苗的镉胁迫 | 第57-65页 |
4.1 材料与方法 | 第57-59页 |
4.1.1 试验材料与生长条件 | 第57页 |
4.1.2 试验设计 | 第57-58页 |
4.1.3 氧化损伤指标的测定 | 第58页 |
4.1.4 光合速率的测量 | 第58页 |
4.1.5 内源硫化氢和脯氨酸含量的测定 | 第58页 |
4.1.6 P5CR和PDH酶活性的测定 | 第58-59页 |
4.1.7 气孔开度与气孔孔径的测定 | 第59页 |
4.1.8 基因转录水平的分析 | 第59页 |
4.1.9 数据分析 | 第59页 |
4.2 结果与分析 | 第59-64页 |
4.2.1 硫化氢和脯氨酸对镉胁迫的响应 | 第59-60页 |
4.2.2 硫化氢和脯氨酸合成相关基因对镉胁迫的响应 | 第60-61页 |
4.2.3 镉胁迫下外源硫化氢对脯氨酸积累的影响 | 第61页 |
4.2.4 镉胁迫下硫化氢与脯氨酸的关系 | 第61-62页 |
4.2.5 外源脯氨酸对谷子幼苗响应镉胁迫的影响 | 第62-63页 |
4.2.6 外源硫化氢和脯氨酸协同处理对镉胁迫的作用 | 第63-64页 |
4.3 讨论 | 第64-65页 |
第五章 硫化氢调节谷子幼苗P-ATPase酶响应镉胁迫 | 第65-72页 |
5.1 材料与方法 | 第66-67页 |
5.1.1 试验材料与生长条件 | 第66页 |
5.1.2 试验设计 | 第66页 |
5.1.3 可溶性糖和可溶性蛋白含量的测定 | 第66页 |
5.1.4 ATPse酶活性的测定 | 第66-67页 |
5.1.5 谷子HMAs家族的聚类分析 | 第67页 |
5.1.6 基因转录水平的分析 | 第67页 |
5.1.7 数据分析 | 第67页 |
5.2 结果与分析 | 第67-70页 |
5.2.1 外源硫化氢对可溶性糖和可溶性蛋白含量的影响 | 第67-68页 |
5.2.2 外源硫化氢对ATP酶活性的影响 | 第68-69页 |
5.2.3 谷子转运蛋白HMAs家族聚类分析 | 第69页 |
5.2.4 外源硫化氢对转运蛋白HMAs表达的影响 | 第69-70页 |
5.3 讨论 | 第70-72页 |
第六章 硫化氢参与茉莉酸甲酯缓解谷子幼苗的镉胁迫 | 第72-81页 |
6.1 材料与方法 | 第72-74页 |
6.1.1 试验材料与生长条件 | 第72-73页 |
6.1.2 试验设计 | 第73页 |
6.1.3 生理参数的测定 | 第73页 |
6.1.4 镉含量的测定 | 第73-74页 |
6.1.5 基因转录水平的分析 | 第74页 |
6.1.6 数据分析 | 第74页 |
6.2 结果与分析 | 第74-78页 |
6.2.1 不同处理对内源硫化氢含量的影响 | 第74-75页 |
6.2.2 茉莉酸甲酯和硫化氢对植株生长的影响 | 第75页 |
6.2.3 茉莉酸甲酯和硫化氢对ROS的影响 | 第75-76页 |
6.2.4 茉莉酸甲酯和硫化氢对镉积累的影响 | 第76-77页 |
6.2.5 茉莉酸甲酯和硫化氢对镉吸收的影响 | 第77-78页 |
6.2.6 茉莉酸甲酯和硫化氢对镉稳态的影响 | 第78页 |
6.3 讨论 | 第78-81页 |
第七章 结论 | 第81-82页 |
第八章 展望 | 第82-83页 |
参考文献 | 第83-107页 |
附录 | 第107-108页 |
主要试剂与仪器 | 第108-109页 |
致谢 | 第109-110页 |
博士期间发表的论文 | 第110-111页 |
个人简况及联系方式 | 第111-113页 |