摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-20页 |
·多氯联苯 | 第11-13页 |
·PCBs的命名 | 第11页 |
·PCBs的污染现状 | 第11-12页 |
·PCBs对生物体的危害 | 第12-13页 |
·氧化应激 | 第13-16页 |
·氧化应激与自由基 | 第13-14页 |
·ROS的产生 | 第14-15页 |
·抗氧化相关基因的调控 | 第15页 |
·线粒体抗氧化反应 | 第15页 |
·心磷脂 | 第15-16页 |
·细胞凋亡 | 第16-18页 |
·细胞凋亡相关基因的介绍 | 第16-17页 |
·细胞凋亡途径 | 第17-18页 |
·稀有鮈鲫 | 第18页 |
·研究的目的及意义 | 第18-20页 |
第二章 Aroclor1254诱导稀有鮈鲫幼鱼抗氧化相关基因表达的研究 | 第20-26页 |
·试验材料与方法 | 第20-22页 |
·稀有鮈鲫 | 第20页 |
·暴露与取样 | 第20-21页 |
·RNA的提取及反转 | 第21页 |
·稀有鮈鲫NF-κB和Gclc cDNA片段的克隆 | 第21页 |
·实时定量PCR | 第21-22页 |
·H_2O_2和蛋白巯基的含量的测定 | 第22页 |
·数据分析 | 第22页 |
·试验结果与分析 | 第22-24页 |
·Aroclor1254对H_2O_2和蛋白巯基含量的影响 | 第22-23页 |
·Aroclor1254对抗氧化相关基因表达的影响 | 第23-24页 |
·讨论 | 第24-25页 |
·小结 | 第25-26页 |
第三章 Aroclor 1254诱导稀有鮈鲫幼鱼细胞凋亡相关基因表达的研究 | 第26-31页 |
·试验材料与方法 | 第26-27页 |
·试验用鱼 | 第26页 |
·暴露与取样 | 第26页 |
·RNA的提取及反转 | 第26页 |
·稀有鮈鲫p53、Trx1、JNK、Puma、Casp8、Casp9、Bcl2以及Baxa cDNA片段的克隆 | 第26页 |
·实时定量PCR | 第26-27页 |
·数据分析 | 第27页 |
·试验结果与分析 | 第27-29页 |
·Aroclor1254对细胞凋亡相关基因表达的影响 | 第27-29页 |
·讨论 | 第29-30页 |
·小结 | 第30-31页 |
第四章 Aroclor1254诱导稀有鮈鲫肝脏线粒体氧化应激反应的研究 | 第31-38页 |
·试验材料与方法 | 第31-33页 |
·试验用鱼 | 第31页 |
·暴露与取样 | 第31-32页 |
·RNA的提取及反转 | 第32页 |
·稀有鮈鲫Cls和Trx2 cDNA片段的克隆 | 第32页 |
·实时定量PCR | 第32页 |
·酶活性及物质含量的测定 | 第32-33页 |
·数据分析 | 第33页 |
·试验结果与分析 | 第33-35页 |
·Aroclor1254对稀有鮈鲫肝脏H_2O_2、GSH以及MDA含量的影响 | 第33-34页 |
·Aroclor1254对稀有鮈鲫肝脏相关基因表达的影响 | 第34-35页 |
·讨论 | 第35-37页 |
·小结 | 第37-38页 |
结论、创新点 | 第38-39页 |
参考文献 | 第39-45页 |
附录 | 第45-58页 |
缩略词 | 第58-59页 |
致谢 | 第59-60页 |
作者简介 | 第60页 |